Food Science and Preservation

The Korean Society of Food Preservation

Food Sci. Preserv. 2024; 31(2):276-286

pISSN: 3022-5477, eISSN: 3022-5485

DOI: https://doi.org/10.11002/fsp.2024.31.2.276

Research Article

후코이단/이고들빼기 혼합물에 의한 HepG2 간암세포의 apoptosis 유도

박세은¹^,^‡

, 최다빈²^,^‡

, 오교녀³

, 김한중²

, 박형범²

, 김기만¹^,^*

Induction of apoptosis using the mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract in HepG2 liver cancer cells

Se-Eun Park¹^,^‡

, Dabin Choi²^,^‡

, Kyo-nyeo Oh³

, Hanjoong Kim²

, Hyungbum Park²

, Ki-Man Kim¹^,^*

¹광주대학교 건강기능식품학과

²㈜천연스토리

³전라남도 천연자원연구센터

¹Department of Health Functional Food, Gwangju University, Gwangju 61743, Korea

²Natural Story Co., Ltd, Jangseong 57248, Korea

³Jeonnam Institute of Natural Resources Research, Jangheung 59338, Korea

^*Corresponding author Ki-Man Kim, Tel: +82-62-670-2444, E-mail: kmkim@gwangju.ac.kr

These authors contributed equally to this study.

Citation: Park SE, Choi D, Oh K, Kim H, Park H, Kim KM. Induction of apoptosis using the mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract in HepG2 liver cancer cells. Food Sci. Preserv., 31(2), 276-286 (2024)

Copyright © The Korean Society of Food Preservation. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

Received: Dec 27, 2023; Revised: Feb 15, 2024; Accepted: Mar 04, 2024

Published Online: Apr 30, 2024

Abstract

In the present study, we investigated whether a mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) had the potential to improve the therapeutic efficacy of cancer treatment. The results demonstrated that FCE significantly reduced cell viability and induced the release of LDH (lactate dehydrogenase) and DNA fragmentation in HepG2 cells in a dose-dependent manner. In addition, FCE treatment also increased the protein expression level of p53, the release of cytochrome c, and the loss of mitochondrial membrane potential. Moreover, FCE dose-dependently increased protein expression levels of Bax, and cleaved caspase-3 and -9. However, FCE decreased the protein expression level of Bcl-2. These results suggest that FCE inhibits cell proliferation and induces apoptosis via the mitochondrial-mediated intrinsic pathway. The present study demonstrates that FCE can be used as an anti-cancer agent for liver cancer based on apoptosis mechanism.

Keywords: fucoidan; Crepidiastrum denticulatum extract; apoptosis; HepG2 human liver cancer cell

1. 서론

암은 전 세계적으로 높은 발병률과 치명률을 가지고 있어 심각한 건강 문제로 여겨지고 있다(Choi, 2021). 암은 세포의 비정상적인 증식에 의해 발생하는 질환으로 이를 치료하기 위한 항암제는 다양한 분자적 기전을 통해 세포 분열 및 증식 억제, 선택적인 세포 사멸(apoptosis) 유도를 통해서 암세포를 제거한다(Kawabe, 2004; Kim, 2018). 그 중, 암세포의 apoptosis 유도를 표적으로 하는 것은 항암제 개발에 있어서 중요 기작으로 여겨지고 있다(Fan 등, 2014; Kim 등, 2016; Luiz-Ferreira 등, 2023). 암 치료를 위해 다양한 종류의 항암제들이 사용되고 있지만, 항암제의 독성으로 인해 암세포뿐만 아니라, 정상 세포에도 영향을 미쳐 다양한 부작용을 야기하고 있다(Gao 등, 2017). 따라서 부작용의 발생을 줄이기 위해 안전성이 검증된 천연 소재를 이용하여 apoptosis 경로를 표적으로 하며, 암세포 제거에 있어서 효과를 나타내는 소재 개발을 위한 연구들이 진행되고 있다(An 등, 2019; Ryu 등, 2021).

후코이단은 다시마와 미역 등을 포함하는 갈조류에서 분리된 고분자의 황화 다당체로 항산화, 항균, 항당뇨, 항바이러스, 항염 등 다양한 생리활성을 가지고 있어 이를 활용하기 위한 다양한 연구들이 이루어지고 있다(Fitton, 2011; Fitton 등, 2015; Kan 등, 2017; Krylova 등, 2021; Mabate 등, 2021; Wang 등, 2012). 또한, 후코이단은 간암, 혈액암, 대장암, 유방암 등의 암세포 내 apoptosis 활성화, 전이 및 신생 혈관 생성 억제 효과가 있음이 보고되며 암 치료에 대한 활용 가능성이 제시되었다(Ale 등, 2011; Atashrazm 등, 2015; Kyung 등, 2012; Nagamine 등, 2009; Senthilkumar 등, 2013; Zhang 등, 2013). 그뿐만 아니라 보충제로서 섭취 시에도 추가적인 암 발생을 예방하는데 효과를 나타내는 것으로 보고되었다.

이고들빼기(Crepidiastrum denticulatum (Houtt.) Pak & Kawano)는 국화목 국화과에 속하는 관속식물로 강화고들빼기로 부르기도 하며 어린 뿌리와 잎이 주로 식용 채소로 이용되고 있다(Lee 등, 2014). 페놀 화합물인 hydroxycinnamic acids, caffeic acid, chlorogenic acid, chicoric acid, 3,5-di-O-caffeoylquinic acid, luteolin-7-O-glucoside 등을 포함하는 다양한 생리활성 물질을 포함하고 있으며, 또한 허혈에 의한 신장 손상 억제, 알코올에 의한 간 손상 및 지방간 생성 억제, 자외선에 의한 피부 손상 억제, 비알코올성 지방간 및 간염 개선, 산화적 스트레스에 의한 망막 손상 억제 효과 등을 가지고 있는 것으로 알려져 있다(Ahn 등, 2014; Kang 등, 2011; Kim 등, 2015; Kim 등, 2017; Lee 등, 2014; Maeda 등, 2006: Yoo 등, 2014). 이고들빼기에서 분리된 화합물인 youngiaside A, B, C가 해독효소인 quinone reductase와 CYP1A1을 유도하여 항암제로 이용 가능성에 대해 보고되어 있지만, apoptosis 유도에 대하여서는 정확하게 보고된 바 없다(Yun 등, 2010).

천연물을 이용한 복합 소재는 유효성이 있는 여러 물질이 복합적으로 이루어진 구성이므로 다양한 효능을 나타낼 수 있으며, 추출 방법이나 혼합 비율에 따라서 효능이 달라지며 기존의 효과 대비 서로 상승효과를 나타낼 수 있어 복합 소재를 이용한 항암제 개발이 진행되고 있다(Kong 등, 2023; Park 등, 2015; Song 등, 2023). 이에 본 연구에서는 기존 연구를 통해 apoptosis에 의한 암세포 사멸 유도 효과가 입증된 후코이단과 apoptosis 유도를 통해 항암 효과를 나타내는 페놀성 화합물인 chlorogenic acid, caffeic acid, hydroxycinnamic acids, luteolin-7-O-glucoside 등을 포함하고 있는 것으로 보고된 이고들빼기를 이용하여 후코이단/이고들빼기 혼합물을 제조하고 이고들빼기 추출물에 의해 기존의 후코이단 단독 처리보다 암세포의 증식 억제 및 apoptosis 유도 효능 증대 여부를 확인하기 위해 인체 간암 세포주인 HepG2 세포를 사용하여 세포 독성과 apoptosis의 유도 및 관련 단백질의 발현 변화를 분석하였다.

2. 재료 및 방법

2.1. 실험 재료

Minimum essential medium (MEM), bicinchoninic acid (BCA) protein assay kit, enhanced chemiluminescent substrate는 Thermofisher (Waltham, MA, USA)에서 구입하여 사용하였다. Fetal bovine serum (FBS)은 Welgene (Gyeongsan, Korea)에서 구입하여 사용하였다. 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT), radioimmunoprecipitation assay (RIPA) buffer는 Sigma-Aldrich Chemical Co (St. Luis, MO, USA)에서 구입하여 사용하였다. Mitochondrial membrane potential assay kit는 Abcam (Cambridge, UK)에서 구입하여 사용하였다. Cytotoxicity detection kit와 cell death detection kit는 Roche Diagnostics (Mannheim, Germany)에서 구입하여 사용하였다. p53, β-actin, cleaved caspase-3, cleaved caspase-9, Bcl-2, Bax, cytochrome c 및 anti-rabbit IgG-HRP conjugated, anti-mouse IgG-HRP conjugated는 Cell Signaling Technology (Beverly, MA, USA)와 Santa Cruz Biotechnology Inc (Santa Cruz, CA, USA)에서 구입하여 사용하였다.

2.2. 후코이단/이고들빼기 혼합물 제조

전남지역에서 채취한 미역귀로부터 분리한 후코이단(순도: 93.3%, 황산기: 35.0%, 총당 함량: 32%)은 Biocorp (Goheung-gun, Korea)에서 구입하여 사용하였다. 이고들빼기 추출물 제조를 위해 전초 35 kg을 세척 후 DW 350 L를 첨가하고 100°C에서 3시간 동안 단회 추출하였다. 추출액을 여과한 후 여과액을 농축기(Tokyo Rikakikai, Tokyo, Japan)를 이용하여 55°C에서 농축하였다. 이고들빼기 농축액을 분무 건조하였다. 이고들빼기 추출물은 8.89 kg을 얻어 25.4%의 수율을 나타냈다. 후코이단/이고들빼기 혼합물은 분말 상태의 후코이단과 이고들빼기 추출물을 각각 1:1 비율로 혼합하여 만든 후 −20°C에 보관하며 실험에 사용하였다.

2.3. 총폴리페놀 및 총플라보노이드 함량 측정

이고들빼기 추출물의 총폴리페놀 함량은 Folin-Denis의 방법에 따라 측정하였다(Folin과 Denis, 1912). 시료 1 mL에 Folin-Ciocalteu reagent 5 mL를 가하여 3분 동안 반응시킨 후 10% Na₂CO₃ 용액 5 mL를 가하였다. 1시간 동안 반응시킨 후 spectrophotometer (Molecular Devices, San Jose, CA, USA)를 이용하여 700 nm에서 흡광도를 측정하였다. 표준물질로 tannic acid를 사용하였으며, 표준물질의 검량선과 비교하여 함량을 구하였다.

2.4. HepG2 세포 배양

본 연구에 사용된 HepG2 세포는 한국세포주은행(Korean Cell Line Bank, Seoul, Korea)으로부터 분양받아 사용하였으며, 10% FBS와 1% antibiotic-antimycotic이 함유된 MEM 배지를 사용하여 5% CO₂, 37°C로 조절된 조건에서 배양하였다.

2.5. MTT assay에 의한 세포 독성 분석

HepG2 세포를 96 well plate에 2×10⁴cells/well로 각 well에 분주하고 16시간 동안 안정화 시킨 후, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 농도별로 처리하였다. 24시간 동안 배양한 후, 배지로 희석한 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT, 0.5 μg/mL)를 각 well에 100 μL씩 첨가하여 4시간 동안 배양하였다. MTT가 포함된 배지를 모두 제거하고 dimethyl sulfoxide (DMSO)를 100 μL씩 각 well에 넣어 생성된 formazan을 녹인 뒤, microplate reader (Molecular Devices)로 540 nm에서 흡광도를 측정해 세포 생존율을 계산하였다.

2.6. LDH activity 분석

HepG2 세포를 24 well plate에 1×10⁴ cells/well로 분주하고 16시간 동안 안정화시킨 후, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 농도별로 24시간 처리하였다. 처리 후 배지를 회수하여 250 ×g에서 5분간 원심분리하였다. 그 후, 상층액을 취하여 96 well plate로 옮긴 후 cytotoxicity detection kit를 이용하여 kit에서 제공한 실험방법에 따라 진행하였다. 상층액 100 μL와 reaction mix reagent 100 μL를 혼합하고 암조건에서 30분간 반응시킨 후 stop solution 50 μL를 가하여 반응을 정지시킨 후 microplate reader로 490 nm에서 흡광도를 측정하여 LDH 활성을 계산하였다.

2.7. DNA fragmentation 분석

HepG2 세포를 24 well plate에 1×10⁴ cells/well로 분주하고 16시간 동안 안정화시킨 후, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 농도별로 24시간 처리하였다. 처리 후 cell death detection kit를 이용하여 kit에서 제공한 실험방법에 따라 진행하였다. 상층액 20 μL와 immunoreagent 80 μL를 혼합하고 암조건에서 2분간 반응시킨 후 ABTS 100 μL를 가하였다. 반응을 정지시키기 위해 stop solution을 처리하고 microplate reader로 405 nm에서 흡광도를 측정하여 DNA fragmentation 정도를 계산하였다.

2.8. MMP 분석

HepG2 세포를 96 well plate에 1.5×10⁴ cells/well로 분주하고 16시간 동안 안정화시킨 후, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 농도별로 24시간 처리한 후 mitochondrial membrane potential assay kit를 이용하여 kit에서 제공한 실험방법에 따라 진행하였다. PBS로 세포를 씻어준 후, JC-1 solution 100 μL를 처리하고 37°C에서 10분간 반응시켜 세포를 염색하였다. JC-1 solution을 제거하고 세포를 PBS로 세포를 씻어준 후, 원심분리하여 얻은 상층액에 reaction mix 50 μL와 4 mM DEVD-pNA 5 μL를 혼합하고 37°C에서 1시간 동안 반응시켰다. Fluoroscence microplate reader (Molecular Devices)로 excitation 485 nm/emission 530 nm에서 흡광도를 측정하여 mitochondrial membrane potential을 계산하였다.

2.9. Caspase-3 activity 분석

HepG2 세포를 60 mm에 1×10⁴ cells/well로 분주하고 16시간 동안 안정화시킨 후, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 농도별로 24시간 처리한 후 caspase-3 assay kit (Abcam)를 이용하여 kit에서 제공한 실험방법에 따라 진행하였다. 처리 끝난 후, 회수한 세포를 lysis buffer 50 μL를 처리하고 10분간 반응시킨 후 원심분리하여 얻은 상층액에 reaction mix 50 μL와 4 mM DEVD-pNA 5 μL를 혼합하고 37°C에서 1시간 동안 반응시켰다. Microplate reader로 400 nm에서 흡광도를 측정하여 caspase-3 활성을 계산하였다.

2.10. Western blot에 의한 단백질 발현 분석

후코이단/이고들빼기 혼합물을 24시간 동안 처리한 후 HepG2 세포를 PBS로 씻어준 후, RIPA buffer 150 μL를 20분간 4°C에서 처리하였다. 세포를 회수하고 4°C, 12,000 rpm으로 20분간 원심분리하여 단백질을 분리하였다. 단백질 농도는 bicinchoninic acid (BCA) protein assay kit (Thermofisher)를 이용하여 microplate reader로 562nm에서 흡광도를 측정하여 계산하였다. 10%, 12% sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE)을 이용하여 단백질을 크기별로 분리한 후, polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane (Sigma-Aldrich Co.)에 transfer하였다. Everyblot blocking buffer (Bio-rad, Hercules, CA, USA)을 이용하여 상온에서 10분 동안 blocking하고 1차 항체(1:1,000-1:5,000)를 실온에서 2시간 반응시켰다. 그 후 2차 항체(1:1,000-1:4,000)를 상온에서 2시간 반응시킨 후, enhanced chemiluminescent substrate (Thermofisher)를 처리하여 PVDF membrane에 나타난 protein band를 Microchemi 4.2 (DNR, Neve Yamin, IS)로 관찰하고 각 단백질의 발현 정도를 분석하였다.

2.11. 통계처리

모든 실험결과는 SPSS statistical package (17.0 version, IBM, Armonk, NY, USA) 프로그램을 이용하여 통계 분석하였으며, 분산분석(ANOVA)을 시행하여 각 결과의 유의성을 검증하였다. 통계적 유의성은 p<0.05 수준에서 비교 분석하였다.

3. 결과 및 고찰

3.1. 이고들빼기 추출물의 총폴리페놀 함량

식물체에 존재하는 폴리페놀 화합물은 flavonoids, anthocyanins, tannins, catechins, isoflavones, resveratrols 등을 포함하는 2차 대사 산물로 분자 내에 히드록실기(-OH)를 가지고 있으며, 뛰어난 항산화와 항암 효과를 가지고 있을 뿐만 아니라 항염증, 콜레스테롤 저하, 정장작용 등의 생리활성을 가지고 있다(Kim 등, 2012b). 본 연구에서 분석한 이고들빼기 추출물의 총폴리페놀 함량은 4,214±2.50 mg/100 g으로 나타났다. 이고들빼기에는 페놀성 화합물인 chlorogenic acid, caffeic acid, hydroxycinnamic acids, luteolin-7-O-glucoside 등 포함되어 있으며 이러한 물질들은 높은 항산화 효과뿐만 아니라, apoptosis를 유도하여 비인두암, 유방암, 신장암, 자궁경부암 등에 대한 항암효과를 가지고 있는 것으로 보고된 바 있어 본 연구에서도 이고들빼기 추출물에 의한 항암 효과도 이와 관련성이 있을 것으로 추정된다(Chang 등, 2010: Chuang등, 2005; Ho 등, 2021; Kaneta 등, 1978; Wang 등, 2019; Zeng 등, 2021).

3.2. 세포 증식 및 독성에 미치는 영향

HepG2 세포에 대한 후코이단/이고들빼기 혼합물의 세포 독성을 확인하기 위해 혼합물을 농도별로 24시간 동안 처리하고 MTT assay를 통해 세포 독성을 평가하였다. 후코이단/이고들빼기 혼합물을 0, 10, 30, 50, 100, 150, 200, 300, 500 μg/mL의 농도로 24시간 동안 처리한 결과, Fig. 1A에서 보여주는 바와 같이 농도별로 105, 101, 99, 91, 86, 77, 62, 41%의 생존율을 나타냈으며 농도 의존적으로 세포 증식을 억제함을 확인하였다.

Fig. 1. Effects of mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) on cell viability and LDH activity of HepG2 cells. Cells were treated with various concentrations of FCE for 24 h. (A) The cell viability was determined by MTT assay. (B) LDH activity was measured by cytotoxicity detection kit. All values are mean±SD (n=3). ^*p<0.05 vs. non-treated group.

Download Original Figure

후코이단/이고들빼기 혼합물의 독성에 의한 HepG2 세포 손상 정도를 확인하기 위하여 배지 내에 존재하는 LDH의 활성을 측정한 결과는 Fig. 1B와 같다. 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리하고 24시간 동안 반응시켰을 때 나타난 LDH 활성을 확인한 결과, 무처리군 대비 농도별로 119, 131, 152%로 농도 의존적으로 증가하였으며, 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리하였을 때는 136% 증가하여 혼합물의 활성이 더 높게 나타남을 확인하였다. 세포 손상이 발생하면 세포질에 존재하는 효소인 LDH는 세포 외부로 유출되어 농도가 증가하며 이로 인해 LDH의 증가는 세포 손상의 지표로 여겨진다(Kim 등, 2016). Apoptosis 또한 세포 손상을 일으키며 LDH 증가가 나타남으로써 apoptosis와 LDH가 세포 생존과 사멸을 조절하는 데 밀접하게 연관되어 있으며 중요한 역할을 하는 것으로 여겨지고 있다(Kim 등, 2012a). 따라서 후코이단/이고들빼기 혼합물에 의해 나타난 세포 증식 억제가 세포 손상에 의한 apoptosis 유도에 의한 것임을 확인할 수 있었다. Guo 등(2016)의 연구에서도 kaempferol에 의해 HepG2 세포 생존율 감소 및 LDH 활성 증가를 확인하였고, 이를 통해서 kaempferol이 세포 증식 억제 및 세포 손상을 증가시키며 apoptosis를 유도한다고 보고하였다.

3.3. DNA fragmentaion에 미치는 영향

후코이단/이고들빼기 혼합물이 HepG2 세포 내 DNA fragmentation에 미치는 영향을 확인하기 위해 측정한 결과는 Fig. 2와 같다. 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리하고 24시간 동안 반응시켰을 때 나타난 DNA fragmentation을 확인한 결과, 무처리군 대비 농도별로 89, 173, 309% 증가하여 혼합물 처리에 의해 DNA fragmentation이 일어난 것을 확인하였으며, 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리하였을 때는 무처리군 대비 212% 증가가 나타나, 혼합물에 의한 DNA fragmentation이 더 강하게 나타남을 확인하였다. Apoptosis가 일어난 세포에서 나타나는 특징 중 하나인 DNA fragmentation은 핵 내의 endonuclease가 활성화되어 chromosomal DNA를 단편화시킴으로써 나타나는 전형적인 현상이다(Yoshida 등, 2006). 이를 통해 후코이단/이고들빼기 혼합물에 의한 HepG2 세포의 증식 억제는 apoptosis에 의해 나타나는 것임을 알 수 있었다. Chao 등(2019)의 연구에서도 peiminine 처리에 의해서 apoptosis가 발생한 세포에서 나타나는 특징 중에 하나인 DNA fragmentation이 나타났으며, apoptosis에서 중심적인 역할을 하는 caspase-3의 활성 억제에 의해 DNA fragmentation이 감소됨을 확인함으로서 piminine이 apoptosis 유도 효과를 가지고 있음을 보고하였다.

Fig. 2. Effect of mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) on DNA fragmentation of HepG2 cells. Cells were treated with FCE or fucoidan for 24 h. The DNA fragmentation were measured by cell death detection kit. All values are mean±SD (n=3). ^*p<0.05 vs. non-treated group.

Download Original Figure

3.4. 미토콘드리아 막 전위 변화와 cytochrome c 발현에 미치는 영향

후코이단/이고들빼기 혼합물의 HepG2 세포 내 apoptosis 유도가 미토콘드리아 손상에 의한 미토콘드리아 막 전위의 탈분극과 연관되어 있는지를 확인하기 위하여 MMP의 변화를 측정한 결과, 무처리군 대비 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리한 군에서는 처리농도 증가에 따라 MMP가 9, 18, 37% 감소됨을 확인하였으며, 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리하였을 때는 무처리군 대비 24% 감소가 나타나 혼합물에 의한 DNA fragmentation이 더 높게 나타남을 확인하였다(Fig. 3A). 또한, 미토콘드리아 내막에 존재하는 cytochrome c는 미토콘드리아 기능 손상으로 인한 막 전위 변화로 인해 세포질 내로 방출이 증가하므로 세포질에서 cytochrome c의 발현 변화를 확인한 결과, 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리한 군에서는 처리농도 증가에 따라 무처리군 대비 미토콘드리아에서 발현은 267, 414, 427% 증가함을 확인하였고, 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리한 군에서는 무처리군 대비 미토콘드리아에서 발현은 322% 증가함을 확인하였다(Fig. 3B).

Fig. 3. Effects of mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) on mitochondrial membrane potential (MMP) and expression of cytochrome c of HepG2 cells. Cells were treated with FCE or fucoidan for 24 h. (A) The MMP was determined by fluorochrome dye 1,1',3,3'-tetraethylbenzimidazolylcarbocyanine iodide (JC-1) staining. (B) Cytochrome c expression level was determined by western blot assay. All values are mean±SD (n=3). ^*p<0.05 vs. non-treated group.

Download Original Figure

MMP는 미토콘드리아 내막의 전기적인 전위 차이를 나타내며, 미토콘드리아 기능의 중요한 지표로 여겨지고 있다(Kunnumakkara 등, 2007). Apoptosis 초기에 MMP의 감소가 나타나며 이로 인해 permeability transition pore의 개방을 유발하여 cytochrome c뿐만 아니라 그 외 apoptosis 유발인자들의 방출이 일어난다(Qi 등, 2017). 방출된 cytochrome c는 단백질 복합체인 apoptosome을 형성하여 caspase의 활성을 증가시키며 최종적으로 apoptosis을 일으키는 역할을 한다(Li 등, 1997; Riedl 등, 2005). 이에 따라 MMP와 cytochrome c는 apoptosis와 밀접하게 연관되어 있으며 apoptosis를 조절하는데 중요한 요소로 볼 수 있다. 따라서 본 연구를 통해 후코이단/이고들빼기 혼합물에 의해 MMP의 감소 및 세포질 내 cytochrome c의 발현 증가를 확인하였으며 이는 후코이단/이고들빼기 혼합물이 미토콘드리아 기능 손상을 유도하여 apoptosis가 일어난 것으로 보여진다. Qi 등(2015)의 연구에서도 고사리 추출물 처리에 의해 HepG2 세포 내 MMP 감소와 cytochrome c의 세포질 내 발현이 증가, caspase 활성 증가를 확인하였으며, 이를 통해서 고사리 추출물에 의한 apoptosis가 mitochondrial related caspase pathway의 활성화에 의해 유도된다고 보고하였다.

3.5. p53과 bcl-2 family 단백질 발현에 미치는 영향

HepG2 세포에서 후코이단/이고들빼기 혼합물에 의한 apoptosis 유도가 p53과 bcl-2 family 발현 조절 여부에 의한 것인지를 확인하기 위해 HepG2 세포에 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리한 후 western blot을 이용하여 관련 단백질 발현 정도를 확인하였다. p53과 bcl-2 family인 Bcl-2와 Bax에 대한 발현을 확인한 결과, p53은 무처리군에 비해 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리군은 149, 331, 669% 발현이 증가하였고, Bcl-2는 22, 48, 50% 발현이 감소하였으며 Bax는 63, 116, 103% 발현이 증가하였다(Fig. 4). 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리한 군은 423% 발현이 증가하였고, Bcl-2는 30% 발현이 감소하였으며 Bax는 72% 발현이 증가하였다.

Fig. 4. Effects of mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) on p53 and Bcl-2 family expression of HepG2 cells. Cells were treated with FCE or fucoidan for 24 h. The protein expression levels were determined by western blot assay. All values are mean±SD (n=3). ^*p<0.05 vs. non-treated group.

Download Original Figure

대표적인 종양 억제유전자인 p53은 외부 자극으로 인해 세포 손상과 함께 DNA 손상이 나타나면 Bcl-2 family의 발현 조절을 통해 apoptosis를 촉진하는 것으로 알려져 있다. Bcl-2 family에는 apoptosis를 유도하는 Bax, Bad, Bid, Bak 등의 단백질들과 apoptosis를 억제하는 Bcl-2, Bcl-xL, Bcl-xL 등의 단백질들이 포함된다. 그 중 Bcl-2는 Bax와 dimer 형태로 결합하여 존재하며 apoptosis를 억제하지만, p53의 발현 증가로 인해 Bcl-2로 분리된 Bax는 미토콘드리아로 이동하여 permeability transition pore의 개방을 유도한다. 이로 인해 세포질 내로 cytochrome c를 방출시켜 apoptosome을 형성하여 caspase의 활성화를 유도해 최종적으로 apoptosis를 유발한다. Kim 등(2012)의 연구에 의하면 목향 에탄올 추출물을 HepG2 세포에 처리하였을 때 Bax와 p53의 발현은 증가했지만 Bcl-2의 발현은 감소하였을 때 cleaved-caspase-3의 발현이 증가하였고, Kim 등(2016)의 연구에서도 개똥쑥 추출물을 HepG2 세포에 처리하였을 때 미토콘드리아의 탈분극과 Bax와 p53의 발현은 증가했지만 Bcl-2의 발현은 감소하였을 때 cleaved-caspase-3의 발현이 증가하며 세포 사멸이 증가하였다. 이러한 결과를 볼 때 후코이단/이고들빼기 혼합물은 HepG2 세포내 p53, Bax, Bcl의 발현 조절을 통해 미토콘드리아의 탈분극과 함께 caspase를 활성화시켜 apoptosis를 유도하였을 것으로 판단된다.

3.6. Caspase 활성에 미치는 영향

HepG2 세포에서 후코이단/이고들빼기 혼합물이 apoptosis를 유도하는 initiator인 caspase-9과 effector caspase인 caspase-3의 발현에 미치는 영향을 확인하기 위해 HepG2 세포에 후코이단/이고들빼기 혼합물을 200, 250, 300 μg/mL 농도로 처리한 후, western blot을 이용하여 관련 단백질 발현 정도를 확인하였다. Cleaved-caspase의 발현 변화를 확인한 결과, cleaved-caspase-9의 경우 무처리군에 비해 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리군은 185, 204, 249% 발현이 감소하였고, caspase-3는 81, 204, 289% 발현이 증가하였다(Fig. 5A). 후코이단만 300 μg/mL 농도로 처리한 군에서는 cleaved-caspase-9은 166%, cleaved-caspase-3는 108% 발현이 증가하였다. 또한, caspase-3 activity를 colorimetric assay kit을 사용하여 측정한 결과에서도 무처리군에 비해 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리군에서 19, 34, 65%로 활성이 증가하였으며, 후코이단만 처리한 구에서는 49%로 활성이 증가하여 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리에 비해 낮은 활성을 나타냈다(Fig. 5B).

Fig. 5. Effects of mixture of fucoidan and Crepidiastrum denticulatum extract (FCE) on caspase expression and caspase activity of HepG2 cells. Cells were treated with FCE or fucoidan for 24 h. The protein expression levels were determined by western blot assay. All values are mean±SD (n=3). ^*p<0.05 vs. non-treated group.

Download Original Figure

Apoptosis 핵심 매개자로 aspartate-specific cysteine related proteases의 일종인 caspase는 세포가 정상적으로 생존 및 증식하는 경우에는 비활성화된 상태의 procaspase 형태로 핵과 mitochondria의 외막에 존재하다가 apoptosis를 유도하는 다양한 자극으로 인해 활성화되면 active protease 형태로 분절되어 aspartic acid 부위만을 선택적으로 절단하여 세포 내 존재하는 단백질들을 분해하며 apoptosis를 유도한다. Caspase들 중 caspase-9은 세포질로 방출된 cytochrome c에 의해 만들어진 apoptosome에 의해 활성화되어 effector caspase인 caspase-3를 활성화시킨다. 활성화된 caspase-3는 PARP, lamin A/C 및 MEKK 및 다른 caspase 등의 단백질에 작용하여 apoptosis를 유도하게 된다. 이러한 근거를 바탕으로 caspases의 활성에 미치는 후코이단/이고들빼기 혼합물의 영향을 조사한 결과, initiator caspase인 caspase-9뿐만 아니라, 대표적인 effector caspase인 caspase-3도 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리에 의해 활성이 증가함을 확인하였으며, 이는 후코이단/이고들빼기 혼합물이 caspase의 활성 증가에 중요한 역할을 하며, p53의 발현과 Bcl-2 family의 변화를 유도하여 caspase-9, −3와 관련된 경로를 경유하는 intrinsic apoptosis를 유발하는 것으로 판단된다. Harakeh 등(2023)의 연구에 의하면 trans-Anethole에 의한 apoptosis에서 HepG2 세포에 처리하였을 때 p53과 caspase-9 및 −3의 활성이 증가함을 확인하였으며, 또한, He 등(2023)의 연구에서도 사차인치의 peptide fraction을 처리에 의한 apoptosis를 확인한 결과, p53 및 Bax의 발현 증가와 Bcl-2의 발현 감소를 나타냈으며, caspase-9, −8, 3의 활성 또한 농도 의존적으로 증가함을 확인하였다.

이상의 결과들로 HepG2 세포에서 후코이단/이고들빼기 혼합물 처리에 의한 세포 증식 억제 및 DNA fragmentation 증가, MMP 감소 및 세포질 내 cytochrome c 증가는 apoptosis 증가와 연관되어 있으며, 이러한 apoptosis 증가는 p53의 발현 증가와 Bcl-2 family 단백질들의 발현 변화뿐만 아니라 caspase의 활성 증가를 통해 이루어진 것을 확인하였다. 또한 후코이단 단독 처리보다 후코이단/이고들빼기 혼합물에서 간암세포인 HepG2 세포의 증식을 억제하는 효과가 더 높게 나타났으며 이는 이고들빼기가 비인두암, 유방암, 신장암, 자궁경부암 등에서 apoptosis 유도하는 것으로 알려진 페놀 화합물인 chlorogenic acid, caffeic acid, hydroxycinnamic acids, luteolin-7-O-glucoside 등을 포함하고 있어, 후코이단과 복합물을 제조하여 처리할 경우 이고들빼기가 가지고 있는 페놀성 화합물들에 의해 시너지 효과를 나타내며 후코이단의 apoptosis 유도 효과가 증가하는 것으로 판단된다. 따라서 후코이단/이고들빼기 혼합물이 apoptosis 유도를 증가시키는 효과를 가지고 있으며, 이로 인해 간암세포 사멸을 유도하여 증식을 억제시킬 수 있을 것으로 사료된다.

4. 요약

본 연구에서는 후코이단/이고들빼기 혼합물이 HepG2 세포의 apoptosis에 미치는 영향을 확인하고 어떠한 경로를 통해 나타나는지를 조사하였다. 후코이단/이고들빼기 혼합물이 HepG2 세포의 증식을 억제하고 세포 독성을 나타냈다. 이러한 HepG2 세포의 증식 억제 및 세포 독성이 apoptosis에 의한 효과인지를 확인한 결과, DNA fragmentation과 mitochondria membrane potential의 저해를 일으키는 것을 확인하였다. 이러한 결과를 바탕으로 HepG2 세포에서 후코이단/이고들빼기 혼합물이 apoptosis를 유도하는 기전에 관여하는 단백질의 발현 양상을 확인한 결과, intrinsic apoptosis 경로인 p53을 증가시키고, Bcl-2 family인 Bcl-2의 억제 및 BAX의 증가를 통해서 cytochrome c를 증가시켜 caspase-9 활성화하였고, caspase-3를 활성화시켜 결과적으로 apoptosis를 유도하였다. 또한, 전반적으로 후코이단/이고들빼기 혼합물의 apoptosis 유도 효과는 후코이단만 처리한 것보다 더 높은 효과를 나타냈으며, 이는 이고들빼기 추출물과의 혼합물 제조를 통해서 후코이단의 apoptosis 유도 효과가 증대되는 것으로 판단된다. 이러한 결과는 후코이단/이고들빼기 혼합물이 HepG2 세포에서 apoptosis 관련 유전자의 발현 조절에 의해 항암 효과를 나타내며, 이는 후코이단/이고들빼기 혼합물의 항암 작용의 기전을 해석하였을 뿐만 아니라, 이러한 기전 연구를 바탕으로 실질적인 간암 치료제로서의 사용 가능성을 확인하기 위해서는 유용 물질 분석 및 in vivo에서 추가 실험 등이 다양하게 수행되어야 할 것으로 판단된다.

Acknowledgements

None.

Conflict of interests

The authors declare no potential conflicts of interest.

Author contributions

Conceptualization: Park SE, Choi D, Kim KM. Methodology: Park SE, Kim H. Formal analysis: Park SE, Park H. Validation: Park SE, Oh K. Writing - original draft: Park SE, Choi D. Writing - review & editing: Park SE, Choi D.

Ethics approval

This article does not require IRB/IACUC approval because there are no human and animal participants.

Funding

Following are results of a study on the “Leaders in INdustryuniversity Cooperation 3.0” Project, supported by the Ministry of Education and National Research Foundation of Korea.

ORCID

Se-Eun Park (First author) https://orcid.org/0000-0001-6644-3080

Dabin Choi (First author) https://orcid.org/0009-0007-1155-936X

Kyo-nyeo Oh https://orcid.org/0000-0001-5432-7015

Hanjoong Kim https://orcid.org/0009-0002-1525-6220

Hyungbum Park https://orcid.org/0009-0001-0093-7974

Ki-Man Kim (Corresponding author) https://orcid.org/0000-0002-2325-077X

References

Ale MT, Maruyama H, Tamauchi H, Mikkelsen JD, Meyer AS. Fucose-containing sulfated polysaccharides from brown seaweeds inhibit proliferation of melanoma cells and induce apoptosis by activation of caspase-3 in vitro. Mar Drugs. 9:2605-2621 2011;

Ahn HR, Lee HJ, Kim KA, Kim CY, Nho CW, Jang H, Pan CH, Lee CY, Jung SH. Hydroxycinnamic acids in Crepidiastrum denticulatum protect oxidative stress-induced retinal damage. J Agric Food Chem. 62:1310-1323 2014;

An W, Lai H, Zhang Y, Liu M, Lin X, Cao S. Apoptotic pathway as the therapeutic target for anticancer traditional Chinese medicines. Front Pharmacol. 10:758 2019;

Atashrazm F, Lowenthal RM, Woods GM, Holloway AF, Dickinson JL. Fucoidan and cancer: A multifunctional molecule with anti-tumor potential. Mar Drugs. 13:2327-2346 2015;

Chang WC, Hsieh CH, Hsiao MW, Lin WC, Hung YC, Ye JC. Caffeic acid induces apoptosis in human cervical cancer cells through the mitochondrial pathway. Taiwan J Obstet Gynecol. 49:419-424 2010;

Chao X, Wang G, Tang Y, Dong C, Li H, Wang B, Wu J, Zhao J. The effects and mechanism of peiminine-induced apoptosis in human hepatocellular carcinoma HepG2 cells. PLoS One. 14:e0201864 2019;

Choi H. Weight change in adulthood and incident risk of cancer. MS Thesis. Seoul University. Korea: p p. 1-5 2021;

Chuang JY, Tsai YY, Chen SC, Hsieh TJ, Chung JG. Induction of G0/G1 arrest and apoptosis by 3-hydroxycinnamic acid in human cervix epithelial carcinoma (HeLa) cells. In Vivo. 19:683-688 2005;

Fan L, Ma Y, Liu Y, Zheng D, Huang G. Silymarin induces cell cycle arrest and apoptosis in ovarian cancer cells. Eur J Pharmacol. 743:79-88 2014;

10.

Fitton JH. Therapies from fucoidan: Multifunctional marine polymers. Mar Drugs. 9:1731-1760 2011;

11.

Fitton JH, Stringer DN, Karpiniec SS. Therapies from fucoidan: An update. Mar Drugs. 13:5920-5946 2015;

12.

Folin O, Denis W. On phosphotungstic-phosphomolybdic compounds as color regents. J Biol Chem. 12:239-243 1912;

13.

Gao S, Li X, Ding X, Qi W, Yang Q. Cepharanthine induces autophagy, apoptosis and cell cycle arrest in breast cancer cells. Cell Physiol Biochem. 41:1633-1648 2017;

14.

Guo H, Ren F, Zhang L, Zhang X, Yang R, Xie B, Li Z, Hu Z, Duan Z, Zhang J. Kaempferol induces apoptosis in HepG2 cells via activation of the endoplasmic reticulum stress pathway. Mol Med Rep. 13:2791-2800 2016;

15.

Harakeh S, Al-Raddadi R, Alamri T, Al-Jaouni S, Qari M, Qari Y, Kumar A, Tashkandi HM, Moulay M, Aldahlawi AM, Slama P, Haque S. Apoptosis induction in human hepatoma cell line HepG2 cells by trans-Anethole via activation of mitochondria-mediated apoptotic pathways. Biomed Pharmacother. 165:115236 2023;

16.

Ho HY, Chen PJ, Lo YS, Lin CC, Chuang YC, Hsieh MJ, Chen MK. Luteolin-7-O-glucoside inhibits cell proliferation and modulates apoptosis through the AKT signaling pathway in human nasopharyngeal carcinoma. Environ Toxicol. 36:2013-2024 2021;

17.

Kan J, Hood M, Burns C, Scholten J, Chuang J, Tian F, Pan X, Du J, Gui M. A Novel combination of wheat peptides and fucoidan attenuates ethanol-induced gastric mucosal damage through anti-oxidant, anti-inflammatory, and pro-survival mechanisms. Nutrients. 9:978 2017;

18.

Kaneta M, Hiroshi H, Endo S, Sugiyama N. Identification of flavones in sixteen Compositae species. Agric Bioi Chem. 42:475-477 1978;

19.

Kang KS, Jho EH, Lee HJ, Oidovsambuu S, Yun JH, Kim CY, Yoo JH, Kim YJ, Kim JH, Ahn SY, Nho CW. Youngia denticulata protects against oxidative damage induced by tert-butylhydroperoxide in HepG2 cells. J Med Food. 14:1198-1207 2011;

20.

Kawabe T. G2 checkpoint abrogators as an anticancer drugs. Mol Cancer Ther. 3:513-519 2004;

21.

Kim BM, Kim GT, Kim EJ, Lim EG, Kim SY, Kim YM. Extract from Artemisia annua Linné induces apoptosis through the mitochondrial signaling pathway in HepG2 cells. J Korean Soc Food Sci Nutr. 45:1708-1716 2016;

22.

Kim DH, Shin EA, Kim B, Shim BS, Kim SH. Reactive oxygen species-mediated phosphorylation of p38 signaling is critically involved in apoptotic effect of Tanshinone I in colon cancer cells. Phytother Res. 32:1975-1982 2018;

23.

Kim DS, Lee SJ, Lee JC, Woo WH, Lim KS, Mun YJ. Ethanol extract of Saussurea lappa root induces apoptosis through an ROS-MAPKs-linked cascade. Yakhak Hoeji. 56:173-179 2012a;

24.

Kim I, Om AS, Kim JH, Kim HR. Screening of ethanol extracts of Korean fruits and vegetables for cell viability and antioxidant enzyme activity on alloxan-induced oxidative stress in pancreatic beta cell. J Korean Soc People Plant Environ. 15:85-92 2012b;

25.

Kim JS, Jang HJ, Jeong EK, Kim SS, Kim YM, Lee JH, Oh MY, Lee DK, Yelithao K, Kwan HC, Nho CW, Eom DW. Crepidiastrum denticulatum extract ameliorates kidney ischemia-reperfusion injury in mice. Transplant Proc. 50:1160-1166 2018;

26.

Kim M, Park YG, Lee HJ, Lim SJ, Nho CW. Youngiasides A and C isolated from Youngia denticulatum inhibit UVB-induced MMP expression and promote type I procollagen production via repression of MAPK/AP-1/NF-κB and activation of AMPK/Nrf2 in HaCaT cells and human dermal fibroblasts. J Agric Food Chem. 63:5428-5438 2015;

27.

Kim MS, Yoo GH, Randy A, Kim HS, Nho CW. Chicoric acid attenuate a nonalcoholic steatohepatitis by inhibiting key regulators of lipid metabolism, fibrosis, oxidation, and inflammation in mice with methionine and choline deficiency. Mol Nutr Food Res. 61:1600632 2017;

28.

Kim SN, Kim MR, Cho SM, Kim SY, Kim JB, Cho YS. Antioxidant activities and determination of phenolic compounds isolated from oriental plums (soldam, oishiwase and formosa). Nutr Res Pract. 6:277-285 2012c;

29.

Kong F, Wang C, Zhang J, Wang X, Sun B, Xiao X, Zhang H, Song Y, Jia Y. Chinese herbal medicines for prostate cancer therapy: From experimental research to clinical practice. Chin Herb Med. 15:485-495 2023;

30.

Krylova NV, Silchenko AS, Pott AB, Ermakova SP, Iunikhina OV, Rasin AB, Kompanets GG, Likhatskaya GN, Shchelkanov MY. In vitro anti-orthohantavirus activity of the high-and low-molecular-weight fractions of fucoidan from the brown alga Fucus evanescens. Mar Drugs. 19:577 2021;

31.

Kunnumakkara AB, Nair AS, Ahn KS, Pandey MK, Yi Z, Liu M, Aggarwal BB. Gossypin, a pentahydroxy glucosyl flavone, inhibits the transforming growth factor beta-activated kinase-1-mediated NF-kappaB activation pathway, leading to potentiation of apoptosis, suppression of invasion and abrogation of osteoclastogenesis. Blood. 109:5112-5121 2007;

32.

Kyung J, Kim D, Park D, Yang YH, Choi EK, Lee SP, Kim TS, Lee YB, Kim YB. Synergistic anti-inflammatory effects of Laminaria japonica fucoidan and Cistanche tubulosa extract. Lab Anim Res. 28:91-97 2012;

33.

Lee HJ, Cha KH, Kim CY, Nho CW, Pan CH. Bioavailability of hydroxycinnamic acids from Crepidiastrum denticulatum using simulated digestion and Caco-2 intestinal cells. J Agric Food Chem. 62:5290-5295 2014;

34.

Li P, Nijhawan D, Budihardjo I, Srinivasula SM, Ahmad M, Alnemri ES, Wang X. Cytochrome c and dATP-dependent formation of Apaf-1/caspase-9 complex initiates an apoptotic protease cascade. Cell. 91:479-489 1997;

35.

Luiz-Ferreira A, Pacifico T, Cruz AC, Laudisi F, Monteleone G, Stolfi C. TRAIL-sensitizing effects of flavonoids in cancer. Int J Mol Sci. 24:16596 2023;

36.

Mabate B, Daub CD, Malgas S, Edkins AL, Pletschke BI. Fucoidan structure and its impact on glucose metabolism: Implications for diabetes and cancer therapy. Mar Drugs. 19:30 2021;

37.

Nagamine T, Hayakawa K, Kusakabe T, Takada H, Nakazato K, Hisanaga E, Iha M. Inhibitory effect of fucoidan on Huh7 hepatoma cells through downregulation of CXCL12. Nutr Cancer. 61:340-347 2009;

38.

Park C, Hong SH, Choi SH, Lee SR, Leem SH, Choi YH. Sagantang-induced apoptotic cell death is associated with the activation of caspases in AGS human gastric carcinoma cells. J Life Sci. 25:1384-1392 2015;

39.

Qi G, Liu Z, Fan R, Yin Z, Mi Y, Ren B, Liu X. Athyrium multidentatum (Doll.) Ching extract induce apoptosis via mitochondrial dysfunction and oxidative stress in HepG2 cells. Sci Rep. 7:2275 2017;

40.

Riedl SJ, Li W, Chao Y, Schwarzenbacher R, Shi Y. Structure of the apoptotic protease-activating factor 1 bound to ADP. Nature. 434:926-933 2005;

41.

Ryu SM, Kim YH, Lee EJ, Chung C, Kim JS. Anti-proliferative effects and apoptosis induced by chrysin or emodin in human colorectal HCT116 cells. J Life Sci. 31:929-936 2021;

42.

Senthilkumar K, Manivasagan P, Venkatesan J, Kim SK. Brown seaweed fucoidan: Biological activity and apoptosis, growth signaling mechanism in cancer. Int J Biol Macromol. 60:366-374 2013;

43.

Song Y, Lee SY, Kim S, Choi I, Kim N, Park J, Seo HR. HO-1089 and HO-1197, novel herbal formulas, have antitumor effects via suppression of PLK1 (Polo-like Kinase 1) expression in hepatocellular carcinoma. Cancers (Basel). 15:851 2023;

44.

Wang W, Wang SX, Guan HS. The antiviral activities and mechanisms of marine polysaccharides: An overview. Mar Drugs. 10:2795-2816 2012;

45.

Wang X, Liu J, Xie Z, Rao J, Xu G, Huang K, Li W, Yin Z. Chlorogenic acid inhibits proliferation and induces apoptosis in A498 human kidney cancer cells via inactivating PI3K/Akt/mTOR signalling pathway. J Pharm Pharmacol. 71:1100-1109 2019;

46.

Yang BK, Hwang SL, Yun IJ, Do EJ, Lee WH, Jung YM, Hong SC, Park DC. Antitumor effects and immunomodulating activities of Phellinus linteus extract in a CT-26 cell-injected colon cancer mouse model. Mycobiology. 37:128-132 2009;

47.

Yoo JH, Kang KS, Yun JH, Kim MA, Nho CW. Crepidiastrum denticulatum extract protects the liver against chronic alcohol-induced damage and fat accumulation in rats. J Med Food. 17:432-438 2014;

48.

Yun JH, Lee SB, Lee HJ, Kim CY, Kim MA, Sohn YC, Nho CW. Bi-functional induction of the quinone reductase and cytochrome P450 1A1 by youngiasides via Nrf2-ARE and AhR-XRE pathways. Biol Pharm Bull. 33:1650-1657 2010;

49.

Yoshida A, Pommier Y, Ueda T. Endonuclease activation and chromosomal DNA fragmentation during apoptosis in leukemia cells. Int J Hematol. 84:31-37 2006;

50.

Zeng A, Liang X, Zhu S, Liu C, Wang S, Zhang Q, Zhao J, Song L. Chlorogenic acid induces apoptosis, inhibits metastasis and improves antitumor immunity in breast cancer via the NF-κB signaling pathway. Oncol Rep. 45:717-727 2021;

51.

Zhang Z, Teruya K, Yoshida T, Eto H, Shirahata S. Fucoidan extract enhances the anti-cancer activity of chemotherapeutic agents in MDA-MB-231 and MCF-7 breast cancer cells. Mar Drugs. 11:81-98 2013;