보리수 열매 식초 발효 중 이화학적 특성, phytochemical 함량 및 생리활성 변화

보리수 열매 식초는 경상남도 거제시 남부면 소재 수림 농장에서 담금한 후 10일이 경과한 시료를 60일간 채취하 여 사용하였다. 본 실험에 사용한 미생물 배양용 배지는 Difco사 제품(USA)을 사용하였다. 12개 표준 phenolic acid 화합물(gallic acid, p-hydroxylbenzoic acid, protocatechuic acid, vanillic acid, p-coumraic acid, caffeic acid, ferulic acid, tannic acid, salicylic acid, trans-cimmamic acid 및 chlorogenic acid) 및 3개 표준 flavanol 화합물(rutin, qucercetin 및 kaempferol), 7개의 flavan-3-ol 표준 화합물(catechin, epicatechin, epigallocatechin, catechin gallate, epicatechin gallate, gallocatechin gallate, 및 epigallocatechin gallate)은 Sigma Chemical Co.(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였다. 10개 표준 유기산 화합물(oxalic acid, tartaric acid, malic acid, ascorbic acid, acetic acid, maleic acid, citric acid, succinic acid, fumaric acid, glutaric acid) 역시 Sigma Chemical Co.에서 구입하였다. HPLC-grade H₂O, methanol, acetonitrile 그리고 glacial acetic acid는 Fisher Scientific (Fairlawn, NJ, USA)에서 구입하였다. Folin–Cicalteu phenol, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH), potassium ferricyanide, trichloroacetic acid(TCA), 2,2'-Azino-bis(3- ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt(ABTs), 2,4,6- tri(2-pyridyl)-1,3,5-triazine(TPTZ), p-nitrophenol- α-D-glucopyranoside (p-NPG), p-nitrophenol-butyrate(p-NPB) α-glucosidase(Type I: from Bakers Yeast), α-amylase(Human saliva), lipase(Type II: porcine pancreas)또한 Sigma Chemical Co.에서 구입하 였다.

pH는 pH meter(MP 220 pH meter, U.K)를 사용하여 측정 하였다. 산도는 보리수 열매 식초 발효액 10 mL에 대해서 0.1 N-NaOH로 pH 8.3까지 중화시킨 후 아래의 식을 통하여 초산의 양으로 환산하였다.

$\begin{array}{l}\text{산도(\%, as Acidity acetic acid)=0.006×mL of 0.1 N}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}\hspace{1em}NaOH×F×100/Sample}\left(\text{mL}\right)\end{array}$

환원당은 Miller의 DNS법(13)을 사용하여 분석하였다. 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 후 상등액을 3차 증류수로 50배 희석한 후 시료 0.1 mL에 DNS 시약을 1 mL 첨가하여 100℃의 끓는 물에서 10분 동안 발색시킨 후 얼음물에서 급속히 냉각하여 분광광도계(Spectronic 2D, USA)를 사용하여 570 nm에서 흡광도를 측정하여 검량선 과 비교하였다. 검량선 작성을 위한 표준물질로는 포도당 을 사용하였다.

알코올 측정은 증류법으로 발효 중에 있는 시료 100 mL 에 물 100 mL를 가하여 희석시킨 후 증류시켜 80 mL을 회수한 후 증류수 20 mL를 넣어 100 mL로 표선을 맞춘 다음 알코올계로 측정하였다.

보리수 열매 식초 발효 중의 초산균수 측정은 발효액을 멸균증류수로 10배 희석하고 yeast extract(1%), CaCO₂ (4%), ethanol(1.5%)이 함유된 YCE 한천배지에 도말한 후 30℃에서 72시간 동안 배양한 후 clear zone이 형성된 집락 을 계수하여 초산균수를 측정하였다. 효모균수 측정은 발 효액을 멸균증류수로 10단 희석법으로 적당히 희석하고 potato dextrose 한천배지(PDA)에 chlorophenicol 100 μg/mL 이 함유된 배지에 speared plate method로 도말한 후 30℃에 서 72시간 동안 배양하여 형성된 집락을 계수하여 효모균 수를 측정하였다.

유기산 분석은 TSKgel ODS-100V column(4.6×250 mm, 5 μm, Tosoh Corp., Tokyo, Japan)과 HPLC(Agilent 1200 series, Agilent Co., Forest Hill, Australia)을 이용하여 분석되 었다. 0.1% phosphoric acid를 이용하여 30분 수행하였고 40℃에서 1 mL/min의 흐름을 적용하였다. 시료는 20 μL를 주입하였고 UV 검출기(Agilent 1200 series, Agilent Co.) 210 nm에서 측정하였다.

수용성 phenolics는 Folin-Ciocalteu법(14)으로 측정하였 다. 각각의 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 상등 액을 50배 혹은 100배 희석한 후 0.5 mL를 시험관에 분주하 고 25% Na₂CO₃ 용액 0.5 mL를 첨가하여 3분간 정치시켰다. 다시 2 N-Folin-Ciocalteu phenol 시약 0.25 mL를 첨가하여 혼합한 다음 상온에서 1시간 동안 정치시켜 발색시켰다. 발색된 청색을 분광광도계(Spectronic 2D)를 이용하여 750 nm에서 흡광도를 측정하였다. 이때 총 phenolics 함량은 gallic acid를 이용하여 작성한 표준곡선으로부터 함량을 구하였다. Gallic acid를 이용한 표준곡선은 gallic acid의 최종농도가 0, 25, 50 100 mg/L가 되도록 하여 위와 같은 방법으로 750 nm에서 흡광도를 측정하여 작성하였다. 각 실험은 3회 반복하여 수행하였다.

수용성 flavonoids는 Lee 등(5)의 방법과 동일하게 측정하 였다. 즉 각각의 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 상등액 0.5 mL를 시험관에 취하고 여기에 diethylene glycol 1.0 mL 및 1 N NaOH 0.01 mL를 가하여 37℃에서 1시간 반응시켰다. 그 후 분광광도계(Spectronic 2D)를 이용하여 420 nm에서 흡광도를 측정하였다. 이때 표준물질은 rutin을 이용하여 작성한 표준 검량곡선으로부터 값을 산출하였다.

Flavanol 분석은 TSKgel ODS-100Z column(4.6×250 mm, 5 μm, Tosoh Corp. Tokyo, Japan)과 HPLC(Agilent 1200 series, Agilent Co.)을 이용하여 분석되었다. 10에서 100% B linear gradient로 0.5% acetic acid(pH 2.5)(solution A) 와 100% Acetinitrile(solution B)을 이용하여 30분 수행되었고 30℃에서 1 mL/min의 흐름을 적용되었다. 시료 20 μL를 주입하였고 UV 검출기(Agilent 1200 series, Agilent Co.)의 270 nm에서 측정하였다(1).

Phenolic acid 분석은 XTerra^TM RP C8 column(4.6×250 mm, 5 μm, Waters Corp. Milford, MA, USA)과 HPLC(Agilent 1200 series, Agilent Co.)을 이용하여 분석되었다. 0.5% glacial acetic acid(solution A)와 100% 메탄올(solution B)로 40분으로 60-100% linear gradient한 것은 30℃에서 1 mL/min의 흐름률을 적용하였다. 시료는 20 μL로 주입하였 고 UV 검출기(Agilent 1200 series, Agilent Co.)의 280 nm에 서 측정하였다(1).

Lee 등(5)의 방법을 따라 라디칼 소거활성을 측정하였다. 1.5×10^-4 M DPPH(1,1-diphenyl-2-picryhdrazyl) 용액 0.8 mL 와 각각의 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 상등액 0.2 mL를 가한 후 10 초간 vortex하고 실온에서 30분 방치한 후 분광광도계(Spectronic 2D)를 이용하여 525 nm에서 흡 광도를 측정하였다. 각 실험은 3회 반복하여 수행하였다. 음성 대조구 실험은 시료 대신에 증류수를 0.2 mL를 취하여 실험하였다. DPPH 라디칼 소거활성은 실험구와 음성 대조 구의 흡광도를 구하여 아래와 같이 백분율(%)로 표시하 였다.

$\begin{array}{l}\text{DPPH 라디칼 소거 활성(\%)=[1-(실험구의 흡광도/음성}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}대조구의 흡광도)]×100}\end{array}$

7 mM ABTS 용액과 2.45 mM K2S2O8을 1:1로 섞고, 암실 에서 12~16시간 보관하여 ABTS radical(ABTS^＋•)을 생성시 켰다. ABTS radical(ABTS^＋•)은 732 nm에서 흡광도값이 0.7±0.02가 되도록 에탄올로 희석하여 사용하였다. 에탄올 로 희석된 ABTS 용액(흡광도 0.7±0.02) 0.9 mL과 각각의 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 상등액 0.1 mL를 섞고, 정확히 3분 후 분광광도계(Spectronic 2D)를 이용하여 732 nm에서 흡광도를 측정하였다(5). ABTS cation(ABTS^＋•) 라디칼 소거활성은 실험구와 음성 대조구의 흡광도를 구하 여 아래와 같이 백분율(%)로 표시하였다.

$\begin{array}{l}\text{ABTS 라디칼 소거 활성(\%)=1-[(실험구의 흡광도/음성}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}대조구의 흡광도)]×100}\end{array}$

각각의 식초 발효액을 원심분리기로 원심분리한 상등액 을 분석시료로 준비하였다. hydroxyl 라디칼 소거능은 10 mM FeSO₄·7H20-EDTA 0.2 mL, 10 mM 2-deoxyribose 0.2 mL, 10 mM H₂O₂ 0.2 mL 및 식초 시료액 1.4 mL를 혼합하고 37℃에서 4시간 동안 반응시켰다. 이 혼합액에 1% thiobarbituric acid와 2.8% trichloroacetic acid를 각각 1 mL 를 가하여 100℃에서 20분간 가열하여 발색후 냉각시키고 520 nm에서 흡광도를 측정하였다(15). 음성 대조구 실험은 시료 대신에 완충액을 사용하였고, 라디칼 소거능은 시료 용액의 첨가구와 무첨가구 사이의 흡광도의 차이를 백분율 (%)로 나타내었다.

$\begin{array}{l}\text{Hydroxyl 라디칼 소거 활성(\%)=1-[(실험구의 흡광도/음성}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}대조구의 흡광도)]×100}\end{array}$

각각의 식초 발효액을 원심분리한 상등액 50 μL, 0.5 U/mL α-glucosidase 효소액 50 μL 및 200 mM sodium phosphate buffer(pH 6.8) 50 μL와 혼합하여 37℃에서 10분 간 반응 후 sodium phosphate buffer(pH 6.8)에 5 mM p-NPG 을 100 μL 가하여 37℃에서 10 분간 반응시켰다. 반응액에 100 mM Na₂CO₃ 750 μL로 반응을 정지시키고 420 nm에서 흡광도를 측정하고 저해율을 계산하였다. 음성 대조구로 완충액을 사용하였다(15). 각 실험은 3회 반복하여 수행하 였다.

$\begin{array}{l}\text{α-Glucosidase 저해 활성(\%)=1-[(실험구의 흡광도/음성}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}대조구의 흡광도)]×100}\end{array}$

각각의 식초 발효액을 원심분리한 상등액 50 μL을 시험 관에 분주한 후 α-amylase(1.0 U/mL) 효소 용액 50 μL와 200 mM sodium phosphate buffer(pH 6.8) 50 μL를 첨가하여 37℃에서 10분간 예비 반응을 시켰다. 이 반응액에 200 mM sodium phosphate buffer(pH 6.8) 에 녹인 1% 전분 용액을 0.25 mL를 가하여 다시 37℃에서 10분간 반응 시켰다. 이후 에는 0.5 N NaOH 및 30% 타르타르산나트륨칼륨을 용해한 48 mM DNS 시약을 0.25 mL 첨가하여 100℃에서 20분간 끓여 발색시킨 후 바로 냉각시키고 570 nm에서 흡광도를 측정하였다(16). 모든 효소 저해 활성의 음성 대조구는 시료 대신에 완충액을 취하였으며 시료용액의 첨가구와 무첨가 구 사이의 흡광도 차이를 백분율(%)로 나타내었다.

$\begin{array}{l}\text{α-Amylase 저해 활성(\%)=1-[(실험구의 흡광도/음성 대조}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}구의 흡광도)]×100}\end{array}$

Pancreatic lipase 저해 활성은 각각의 식초 발효액을 원심 분리한 상등액 50 μL, pancreatic lipase(1.0 U/mL) 효소 용액 50 μL 및 200 mM sodium phosphate buffer(pH 6.8) 50 μL를 혼합하여 37℃에서 10분간 예비 반응시켰다. 반응 후 sodium phosphate buffer(pH 6.8)에 녹인 5 mM p-nitrophenolbutyrate( p-NPB) 100 μL를 가하여 동일하게 10분간 반응시 킨 후 100 mM Na₂CO₃ 0.75 mL를 가해 반응을 종결시켜 420 nm에서 흡광도를 측정하였다(17). 모든 효소 저해 활성 의 음성 대조구는 시료 대신에 완충액을 취하였으며 시료용 액의 첨가구와 무첨가구 사이의 흡광도 차이를 백분율(%) 로 나타내었다.

$\begin{array}{l}\text{Pancreatic lipase 저해 활성(\%)=1-[(실험구의 흡광도/음성}\\ \text{\hspace{1em}\hspace{1em}대조구의 흡광도)]×100}\end{array}$

뜰보리수 열매 식초의 발효 기간별 이화학적 특성 변화 는 Table 1과 같았다. 발효 10일째 pH는 3.55 수준이었고 발효 20일째에는 3.44로 측정되었다. 발효 40일째에는 이보 다 약간 더 감소하여 3.36이었고 발효 60일째 3.34로 발효가 진행됨에 따라 조금씩 감소하는 경향을 보였다. 산도는 발 효 10일째 0.48%로 나타났고 발효 20일째 1.92%를 나타내 었고 발효 40일째 급격히 증가하였고 발효 60일째 5.48%로 크게 증가하였다. 환원당은 발효 10일째 6.88 mg/mL를 함 유하고 있었고 발효 과정 중 서서히 감소하여 발효 40일째 에는 2.13 mg/mL를 함유하고 있었다. 알코올은 발효 10일 째 2.6%로 나타났으며 발효 20일째 7.6%로 가장 높았다. 알코올 함량은 발효 10일째 2.6%에서 20일째까지 증가하 여 6.6%로 최대치를 나타내었고, 이후 감소하여 발효 60일 째 2.0%로 나타났다(Table 1).

뜰보리수 열매 식초의 자연 발효 중 초산균수와 효모균 수 변화는 Table 2와 같았다. 초산균수는 발효 10일째 4.32 log CFU/mL에서 증가하여 발효 60일째 5.4 log CFU/mL 있었고, 효모균수는 발효 10일째 3.23 log CFU/mL에서 증 가하여 발효 40일째 5.8 log CFU/mL로 최대치를 나타낸 후 발효 60일째에는 5.5 log CFU/mL로 감소하였다(Table 2).

일반적으로 식초 발효 시 초산균수가 증가함에 따라 pH, 환원당 그리고 알코올 함량이 감소하는 것은 초산 발효의 전형적인 결과라 할 수 있다(18). 또한 발효가 진행되면서 초산균이 생성한 초산(acetic acid) 등의 유기산에 의해 산도 는 증가하게 되며(7,8) 이는 본 연구 결과와도 일치하였다. 한편 본 연구에서는 발효 20일째 알코올 함량(6.6%)이 가장 높게 나타났고 이는 Table 2에 나타낸바와 같이 발효 20일 째 효모의 생균수(5.15 log CFU/mL)가 초산균 생균수(5.11 log CFU/mL)보다 약간 더 많은 것으로 나타나 초산발효와 알코올 발효가 동시에 진행된 것으로 추정하였다. 발효 40 일째에는 초산균보다는 효모 생균수가 좀 더 많았으나 발효 60일째에는 효모의 경우 감소하는 추세를 나타내 사멸기로 들어섰고 초산균은 정지기에 들어선 것으로 추정되었다.

뜰보리수 열매 식초의 발효 기간별 유기산 함량 변화를 살펴본 결과 Table 3과 같았다. 발효 10일부터 60일까지의 주요 유기산은 acetic acid와 lactic acid의 함량이 가장 높았 으며, glutaric aid는 발효 과정 중 검출되지 않았다. Oxalic acid는 발효 40일까지 0.15 mg/mL로 큰 변화가 없었으나 발효 60일째 0.26 mg/mL로 약간 증가하였다. Tartaric acid 는 발효 40일까지 조금씩 감소하다가 발효 60일째 약간 증가하여 0.93 mg/mL를 함유하고 있었다. 한편 유기산 중 가장 크게 증가한 acetic acid는 발효 10일째 2.64 mg/mL 수준에 불과하였으나 발효가 진행됨에 따라 각각 16.35 mg/mL(발효 20일), 18.31 mg/mL(발효 40일) 및 38.84 mg/mL(발효 60일)를 함유하고 있었다. 이 외 malic acid, lactic acid, citric acid는 발효가 진행됨에 따라 조금씩 증가 하는 경향을 나타내었고 fumaric acid는 발효 40일까지 증가 하다 60일째 약간 감소하였다.

식초 발효에 있어서 풍미 향상에 도움이 된다고 알려져 있는 호박산(succinic acid)은 발효 과정 중 조금씩 증가하여 발효 60일째 2.25 mg/mL를 함유하고 있었다(19). 한편 복분 자 식초(7), 참다래 식초(9), 흑마늘 식초(19) 및 제주감귤 식초(20)의 연구에서는 식초 발효 중 주요 유기산은 acetic acid라고 보고하였고, 이는 본 연구 결과와도 유사하였으나 함량에 따른 차이는 있는 것으로 나타났다. Seo 등(21)은 초산균 종류에 따라 각종 유기산의 함량에 차이가 나타난다 고 보고하였으며 이를 바탕으로 유기산 함량 변화의 차이는 원료 과실의 종류, 초산균의 종류 및 발효 방법 등에 따라 결과가 다르게 도출될 수 있다 판단된다.

뜰보리수 열매 식초의 자연 발효 중 수용성 phenolics 및 flavonoids 함량 변화는 Table 4와 같았다. 수용성 phenolics 함량은 각각 0.79 mg/mL(발효 10일), 1.03 mg/mL (발효 20일), 1.18 mg/mL(발효 40일) 및 1.22 mg/mL(발효 60일)로 발효 과정 중 서서히 증가하였다. 수용성 flavonoids 함량은 각각 0.12 mg/mL(발효 10일), 0.13 mg/mL(발효 20 일), 0.13 mg/mL(발효 40일) 및 0.14 mg/mL(발효 60일)로 발효 과정 중 크게 변화는 없는 것으로 나타났다(Table 4).

뜰보리수 열매 식초의 발효 기간별 flavonols 및 phenolic acids 함량 변화는 Table 5와 같았다. Flavonols 화합물 중 3종의 catechin gallocatechin gallate 및 catechin gallate는 발효 과정 중 검출되지 않았다. Epigallocatechin과 epicatechin 은 발효가 진행됨에 따라 조금씩 함량이 증가하였고, 발효 60일째 각각 24.84 mg/mL 및 37.42 mg/mL를 함유하고 있었 고, epigallocatechin gallate와 epicatechin gallate는 반대로 함량이 감소하여 각각 24.53 mg/mL 및 115.97 mg/mL를 함유하고 있었다. 발효 전 기간에 걸쳐 주요 flavonols 화합 물은 epicatechin gallate이었으나 발효 과정 중 감소하는 결과를 나타내어 발효 60일째 총 flavonols 함량은 202.76 mg/mL를 함유하고 있었다(Table 5).

Phenolic acids 화합물은 11종 중 6종의 화합물(tannic acid, caffeic acid, chlorgenic acid, salicylic acid, sinapic acid 및 t-cinnamic acid)이 검출되지 않았다. 한편 gallic acid, p-hydroxylbenzoic acid 및 p-coumaric acid는 발효 과정 중 조금씩 증가하였고 gallic acid가 가장 크게 증가하였다. 발 효 60일째 각각 95.07 mg/mL, 4.14 mg/mL 및 3.43 mg/mL를 함유하고 있었다. Vanillic acid는 발효 40일째 2. 88 mg/mL 가 검출되었고 이후에는 감소하는 경향을 나타내었다. 한 편 flavonols 함량과는 다르게 총 phenolic acids 함량은 발효 가 진행됨에 따라 조금씩 증가하였고 발효 60일째 322.25 mg/mL를 함유하고 있었다(Table 5).

Flavonols 및 phenolic acids 등의 생리활성 화합물들은 자연계에 널리 존재를 하며 일반적으로 식용 가능한 식물에 존재하고 항산화 활성과 같은 생리활성이 뛰어난 것으로 알려져 있다(5,22). Kim 등(23)은 보리수 열매주의 총 phenolics 함량을 측정한 결과 0.37 mg/mL를 함유한 것으로 보고하였으며, 이는 열매에 다량 함유되어 있으며 떫은맛 에 영향을 주고 항산화 활성과 밀접한 관련이 있다고 보고 하였다(24). 일반적으로 phenolics 화합물들은 분자 내 hydroxyl기가 각종 거대 분자와 결합하여 생리활성을 나타 낸다고 알려져 있다(25). 또한 본 연구에서 검출된 flavonols 중 catechin류와 phenolic acids 중 gallic acid의 경우에는 섭취하였을 시 항산화 활성이 뛰어난 것으로 보고되어있 고, Lee 등(5) 역시 뜰보수리 열매의 주요 화합물은 catechin 류와 gallic acid 등을 함유하고 있다고 보고하여 본 연구 결과와도 일치하였다. 한편 발효초기에는 catechin류 함량 과 탄닌류의 저 분자 phenolic acids 함량이 거의 유사하였으 나, 발효가 진행됨에 따라 catechin류 함량은 감소하였고 탄닌류는 증가하였다. 이는 발효가 진행됨에 따라 수용성 저 분자 탄닌류가 자연 발효액에 더 많이 용출된 것으로 판단되었다. 특히, 본 연구에서는 epigallocatechin gallate 및 epicatechin gallate 2종이 발효 과정 중 점차 감소하였으 며, 이는 발효 미생물이 생성하는 esterase 효소 작용으로 ester 결합된 화합물들이 분해되고 이에 따라 gallic acid가 증가한 것으로 추정되었고다. Cho와 Joo(1) 및 Joo 등(26)은 과실주 발효 시 esterase 효소 작용에 의해 gallic acid가 증가 하는 것으로 보고하여 본 연구 결과와 유사하였다. 따라서 본 연구에서 생리활성 물질의 변화는 발효 원료 및 발효 과정 중 생성되는 산이나 미생물 유래 당 혹은 지방 가수분 해효소 등에 의해 결합형 polyphenol성 화합물이 유리형으 로 전환된 것으로 추정되어졌다.

뜰보리수 열매 식초의 자연 발효 중 항산화 활성(DPPH, ABTS 및 ·OH)을 측정한 결과는 Fig. 1과 같았다. 3 종의 라디칼 소거활성은 발효 20일째 급격히 증가하였고 이후에 도 지속적으로 증가하는 경향을 보였다.

Fig. 1. Change of radical scavenging activity during vinegar fermentation of Elaeagnus multiflora fruit A, DPPH radical scavenging activity; B, ABTS radical scavenging activity; and C, Hydroxyl(·OH) radical scavenging activity. All data are presented as the mean±SD of triplicate determinations.

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DPPH 라디칼 소거활성은 발효 10일째에는 30.88%의 다소 낮은 활성을 나타낸 반면 발효 20일째에는 크게 증가 하여 63.14%를 나타내었다. 발효 40일째에는 약간 증가하 여 68.89%를 나타내었고 발효 60일째에는 71.35%의 우수 한 DPPH 라디칼 소거활성을 보였다(Fig. 1A). ABTS 라디 칼 소거활성은 발효 기간에 따라 각각 27.56%(발효 10일), 62.18%(발효 20일), 76.12%(발효 40일) 및 79.27%(발효 60 일)로 DPPH보다 약간 더 우수한 라디칼 소거활성을 보였다 (Fig. 1B). Hydroxyl(·OH) 라디칼 소거활성 역시 DPPH 및 ABTS와 마찬가지로 발효 과정 중 꾸준히 증가하는 경향을 나타내었고 발효 60일째 68.72%의 소거활성을 보였다 (Fig. 1C).

Kang 등(27)은 항산화 활성의 지표 물질은 phenolic acid 와 flavonoid 화합물이라 하였으며, phenolic 화합물의 농도 가 상승할수록 증가한다고 보고하였다(3). 이러한 연구 결 과로 볼 때 본 연구에서는 flavonols 중에서는 epicatechin gallate와 phenolic acids 중에서는 gallic acid의 영향을 받아 우수한 라디칼 소거활성을 나타낸 것으로 판단되었다. 이 러한 결과는 Hong 등(7)의 복분자 식초, Park 등(28)의 현미 배 식초, Verzalloni 등(29)의 발사믹 식초 연구에서 많은 양의 안토시아닌 및 phenolic 물질들이 항산화 활성 증가에 크게 영향을 미친다는 결과와 일치함을 알 수 있다.

뜰보리수 열매 식초의 발효 기간별 탄수화물(α-glucosidase 및 α-amylase) 및 지방(pancreatic lipase) 분해효소의 저해활 성을 측정한 결과는 Fig. 2와 같았다. 탄수화물 및 지방 분해효소 저해활성은 발효 20일째 급격히 증가하였고 이후 에도 지속적으로 증가하는 경향을 보였다.

Fig. 2. Change of enzymatic inhibition activity during vinegar fermentation of Elaeagnus multiflora fruit A, α-Glucosidase inhibition activity; B, α-Amylase inhibition activity; and C, Pancreatic lipase inhibition activity. All data are presented as the mean±SD of triplicate determinations.

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α-Glucosidase 저해활성은 발효 10일째 5.77%로 아주 낮 은 활성을 보였고 발효 20일째에는 조금 증가하여 33.25% 를 나타내었다. 발효 40일째에는 약 79%를 나타내었고 60 일째에는 85.42%의 우수한 저해활성을 나타내었다(Fig. 2A). α-Amylase 저해활성은 1.22%로 발효 10일째에 거의 활성을 보이지 않았으나 점차적으로 증가하여 발효 60일째 에는52.12%의 우수한 저해활성을 보였다(Fig. 2B). Pancreatic lipase 저해 활성 역시 발효 10일째에는 거의 없었고 발효 40일째 49.21%를 나타내었고 발효 60일째에는 53.66%의 지방분해 효소 저해활성을 나타내었다(Fig. 2C).

탄수화물을 섭취함으로써 α-amylase를 통해 이당류로 분 해되고 분해된 이당류는 α-glucosidase에 의해 단당류로 분 해되어 소장에 존재하는 융털을 통해 흡수되어 혈관으로 당이 이동하게 되며, 혈당이 증가된다. 탄수화물 분해효소 인 α-amylase 혹은 α-glucosidase를 억제시켜 분해되는 다당 류 혹은 이당류의 양을 감소시켜 흡수되는 양을 줄여 급격 한 혈당의 증가를 억제시켜 준다(15,30,31). Pancreatic lipase는 중성지방을 분해하는 효소로 작용한다. 그러나 이 현상이 지속될 경우 체중 증가와 더불어 당뇨, 동맹경화, 심혈관질환 등의 위험에 노출될 수 있으므로(32) 본 연구에 서는 지방분해 효소 저해활성을 측정하였다. 한편, 탄수화 물 분해효소 저해활성에 관여하는 물질은 polyphenol성 화 합물 중 flavonols 화합물로 알려져 있으며(33) 지방 분해효 소 저해활성 역시 polypehnol성 화합물에 유래된 결과들이 보고되어 있다(16). 따라서 본 결과에서 뜰보리수 열매 혹은 이로부터 발효된 식초에 함유된 flavonols 및 phenolic acids 화합물에 기인하여 탄수화물과 지방 분해효소 저해활성이 나타나는 것으로 추측되었다.