Amylase와 glucose isomerase를 이용한 starch로부터 D-fructose의 생산

본 연구에 사용된 수용성 전분(starch)는 ㈜대정시약 (Seoul, Korea)에서 구입하였으며, amylase(BAN480L, Fungamyl 800L, Dextrozyme)는 Novozyme Nordisk (Bagsvaerd, Denmark), 그리고 Streptomyces murinus 유래 glucose isomerase는 Sigma-Aldrich Co.(St. Louis, Mo, USA)에서 구매하였다. 그 외에 기타 실험에 사용한 시약들은 모두 ㈜덕산약품공업 (Ansan, Korea), Sigma-Aldrich Co. (St. Louis, Mo, USA)에서 구매하였다.

Starch로부터 D-glucose 생산을 위하여 상업용 amylase인 BAN 480L, Fungamyl 800L, Dextrozyme 3종이 사용되었다. 본 연구에서 사용한 amylase의 starch에 대한 효소활성 측정을 위하여 효소는 모두 4 U/mL로 동일하게 희석하였다. 희석한 효소 150 μL를 1% starch(50 mM citric acid buffer, pH 5.0) 기질 150 μL와 37°C에서 10분간 반응한 후 효소 반응에 의해 생성된 환원당을 Miller에 의해 소개된 3,5- dinitrosalicylic acid(DNS)시약(Sigma, St. Louis, MO, USA)을 이용한 DNS법에 의해 검토하였다(Miller, 1959). 본 연구에서의 amylase 효소활성 1 unit(U)은 Novozyme의 효소활성측정 표준방법으로 제시되어 있는 시간당 5.26 g의 전분을 분해하는 효소량으로 정의하였다.

Fungamyl 800L이 starch 분해에 미치는 pH의 영향을 검토하기 위하여 pH 3.0-7.0 범위에서 효소활성을 검토하였다. Buffer 50 mM citric acid buffer(pH 3.0-6.0)와 50 mM phosphate buffer(pH 6.0-7.0)를 이용하여 각 pH의 1% starch 기질을 제조하였으며, 기질 150 mL에 4 U/mL 효소 150 mL를 첨가하여 37°C에서 10분간 반응한 후 효소 반응에 의해 생성된 환원당을 DNS법으로 검토하였다. 그리고, 온도가 효소 활성에 미치는 영향을 검토하기 위하여 효소 반응은 30°C에서 70°C 온도 범위에서 진행되었으며, 1% starch 기질(pH 5.0) 150 μL에 4 U/mL 효소 150 μL를 첨가하여 각 온도에서 10분간 반응한 후 효소 반응에 의해 생성된 환원당을 DNS법으로 검토하였다.

Fungamyl 800L에 의한 starch로부터 D-glucose 최대 생산을 위한 starch 농도 및 Fungamyl 800L 농도 규명을 위하여, 1, 5, 10, 15, 20%의 starch 농도에 대하여 400 U/g의 Fungamyl 800L을 이용하여 pH 5.0, 50°C 조건에서 4시간 동안 반응을 진행한 후, 생산된 D-glucose를 분석하였다. Starch로부터 D-glucose 생산에 최적의 효소농도를 규명하기 위하여 10, 20, 40, 80, 160 U/g의 Fungamyl 800L을 20% starch와 pH 5.0, 50°C 조건에서 10시간 동안 반응하여 반응시간에 따른 D-glucose 생산량을 분석하였다. 본 연구에서 D-glucose 생산량은 BIO-LC system(Dionex ICS-3000, Sunnyvale, CA, Thermo Fisher Scientific, USA)에서 CarboPac PAI column에 의해 분석하였다.

Buffer의 농도가 Fungamyl 800L의 starch 분해에 미치는 영향을 검토하기 위하여, 1, 5, 10, 20, 30, 40, 그리고, 50 mM citric acid buffer(pH 5.0)를 제조한 후 20% starch와 혼합하여 기질을 제조하였다. 80 U/g 의 Fungamyl 800L을 각각의 기질에 첨가하여 50°C에서 4시간 동안 반응을 진행한 후 Fungamyl 800L에 의해 starch로부터 분해 생산된 D-glucose를 분석하였다.

본 연구에서 D-glucose로부터 D-fructose 생산을 위하여 이용한 glucose isomerase는 Sigma(St. Louis, MO, USA)에서 S. murinus 유래 glucose isomerase를 구입하여 실험에 사용하였다. S. murinus 유래 glucose isomerase를 3.5-35 U/mL 범위의 다양한 농도를 20% starch와 Fungamyl 800L(80 U/g)의 4시간 반응액에 첨가하여 glucose isomerase 최적 반응 조건인 pH 7.5(100 mM phosphate buffer), 55°C에서 20분간 반응하여 D-fructose를 최대로 전환하는 glucose isomerase의 효소 농도를 규명하였다. 각각의 효소농도 반응에 대한 반응종료는 최종농도 200 mM HCl을 첨가하여 효소반응을 종료하였으며, 반응 결과 생산된 D-fructose는 Bio-LC 시스템을 이용하여 분석하였다. 본 연구에서 glucose isomerase의 1 unit(U)은 최적 반응조건에서 D-glucose로부터 1분간에 1 μmol의 D-fructose를 생산하는 효소량으로 정의하였다.

S. murinus 유래 glucose isomerase의 반응시간에 대한 D-glucose로부터 D-fructose 생산을 검토하기 위하여 20% soluble starch와 80 U/g Fungamyl 800L의 4시간 반응액에 S. murinus 유래 glucose isomerase(35 U/mL)를 첨가하여 pH 7.5(100 mM phosphate buffer), 55°C 조건에서 효소반응을 10-180분간 진행시키면서 각각의 반응시간에 대한 반응 시료 10 μL를 채취하여 200 mM HCl을 이용하여 반응종료 후 반응시간에 대한 D-fructose 생산을 Bio-LC 분석에 의해 진행하였다.

Starch로부터 D-fructose를 Fungamyl 800L과 glucose isomerase 두 효소의 동시효소반응에 의해 생산하기 위하여 최적 pH가 상이한 두 효소의 동시반응에 pH가 미치는 영향을 검토하였다. Fungamyl 800L 80 U/g의 효소와 glucose isomerase 35 U/mL를 pH 3.0-9.0 범위의 각각의 buffer로 제조한 20% starch 기질과 55°C에서 20분간 반응하였다. 본 반응에서 pH 3.0-6.0은 50 mM citric acid buffer, pH 6.0-8.0은 50 mM phosphate buffer, 그리고 pH 8.0-9.0은 50 mM Tris buffer를 이용하여 조성하였다. 두 효소의 동시반응에 의해 starch로부터 D-glucose와 D-fructose 생산에 미치는 pH의 영향을 검토하기 위하여 반응액을 일정 시간 간격으로 10 μL씩 채취한 후 200 mM HCl를 첨가하여 반응을 종료시킨 후 Bio-LC 시스템에 의해 생산된 D-glucose와 D-fructose를 분석하였다.

20% starch(50 mM phosphate buffer, pH 6.0)을 기질로 이용하여 80 U/mL Fungamyl 800L 그리고, 35 U/mL glucose isomerase를 동시에 첨가하여 55°C에서 효소 동시반응에 의한 starch로부터 D-fructose 생산을 검토하였다. 두 효소의 동시반응액은 일정한 반응시간 간격으로 10 μL씩 채취된 후 최종농도 200 mM HCl에 의해 반응 종료 후 Bio-LC 시스템에 의하여 생산된 D-fructose를 분석하였다.

효소반응에 의해 생산된 반응 산물은 반응 종료 후 원심분리(10,000 ×g, 10 min)를 통해 상층액을 회수하고, 상층액을 1,000배 희석하여 0.2 μm filter(ADVANTEC, Japan)에 통과시킨 후 BIO-LC system(Dionex ICS-3000, Sunnyvale, CA, Thermo Fisher Scientific, USA)에서 CarboPac PAI column에 의해 분석되었다. 분석 조건은 distilled water와 200 mM NaOH를 75:25 비율로 혼합한 용출용매를 0.5 mL/min 유속으로 실온에서 분석하였다.

본 연구는 starch로부터 D-fructose를 생산하기 위하여 amylase의 가수분해 반응에 의하여 starch로부터 구성 단당인 D-glucose를 생산하고, D-glucose를 기질로 활용하여 이성화효소인 glucose isomerase와 반응하여 최종적으로 D-fructose를 생산하는 과정으로 효소반응이 구성되어져 있다(Fig. 1). 그러므로, starch로부터 본 연구의 최종 목적 산물인 D-fructose를 생산하기 위해서는 starch로부터 D-fructose 생산에 적용되는 D-glucose를 효율적으로 생산하는 amylase 선정이 중요한 연구라고 할 수 있다. Starch의 가수분해 방법으로는 산 가수분해(Lee 등, 1997), 초임계 처리 가수분해(Miyafuji 등, 2005; Nakata 등, 2006) 등에 의한 가수분해가 보고되어져 있지만, 본 연구에서는 현대식품산업에서 starch 가수분해에 높게 적용되고 있는 효소반응을 통하여 starch로부터 D-glucose를 생산하기 위하여 상용화되고 있는 3종의 amylase(Fungamyl 800L, BAN 480L, Dextrozyme)을 이용하여 starch에 대한 높은 가수분해 활성을 보유한 효소에 대한 검토를 진행하였다. 그 결과, Fungamyl 800L이 starch에 대하여 가장 높은 가수분해 활성을 나타내었으며, BAN 480L과 Dextrozyme은 Fungamyl 800L의 starch에 대한 가수분해 활성과 비교하여 각각 33%, 9%의 효소 활성을 나타내었다(Fig. 2). Starch로부터 D-fructose를 생산하는 반응은 starch로부터 D-glucose를 생산하고, glucose isomerase에 의해 starch로부터 생산된 D-glucose를 D-fructose로 전환하는 2단계 효소 반응으로 진행되기에 starch로부터 D-glucose를 최대한 많은 양을 생산할 수 있는 starch 가수분해 활성이 높은 amylase의 선정은 무엇보다도 중요한 효소선정에 대한 검토라고 할 수 있다. 따라서, starch에 대한 가장 높은 가수분해활성을 보유한 amylase는 starch로부터 구성 단당인 D-glucose를 최대로 생산할 수 있는 효소 활성을 보유한 효소라고 판단되어, 본 연구에서는 starch로부터 D-glucose를 생산하기 위한 amylase로서 Fungamyl 800L을 선정하였다.

Fig. 1. Procedure of enzyme reactions to produce D-fructose from starch. Starch is decomposed into D-glucose by hydrolysis reaction of amylase and then D-glucose is converted to D-fructose by isomerization of glucose isomerase.

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Fig. 2. Hydrolysis activity of amylases (BAN480L, Fungamyl 800L, Dextrozyme) on starch. Each reaction was performed in 50 mM citric acid buffer (pH 5.0) containing 1% starch and 4 unit/mL enzyme and then the produced reducing sugars by enzyme activity was measured by DNS method. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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본 연구에서는 Fungamyl 800L에 의해 starch로부터 D- glucose를 생산을 위한 최적의 starch 농도에 대한 검토를 진행하였다. Fungamyl 800L에 의해 starch로부터 D-glucose를 생산하는 과정은 glucose isomerase에 의해 D-fructose를 생산하기 위한 기질인 D-glucose를 생산하는 효소반응으로서 D-glucose의 최대생산에 가장 효율적인 starch 기질의 농도 규명은 최종적으로 D-fructose의 생산성을 향상시키는 매우 중요한 효소 반응이라고 할 수 있다. 본 연구에서는 최적의 starch 기질 농도를 규명하기 위하여 1-20% 농도 범위의 starch를 기질로 이용하여 Fungamyl 800L의 가수분해 활성에 의해 생산되는 D-glucose를 분석하였다. 각각의 기질 농도 starch와 Fungamyl 800L을 55°C, pH 5.0 조건에서 4시간 동안 반응하였을 때, 1%, 5%, 10%, 15%, 그리고 20%의 starch 농도에서 D-glucose는 각각 4.8, 20, 36, 48, 그리고 56 g/L가 생산되었으며, starch의 농도가 증가하면 할수록 생산되는 D-glucose의 양은 지속적으로 증가하는 결과를 보였다(Fig. 3). 본 연구에서는 20% starch로부터 가장 높은 D-glucose 생산이 확인 되었으며, 1% starch 기질 농도와 비교하였을 때 20% starch 농도에서는 약 11.7배 높은 D-glucose 생산을 보였다. 이러한 결과로부터 starch 농도가 높을수록 Fungamyl 800L의 가수분해 활성에 의해 D-glucose 생산량이 증가할 것이라는 것이 예상되었지만, 본 연구에서 기질로 활용한 starch 기질은 20%를 초과하는 농도에서는 완전한 용해가 이루어지지 않아 20%보다 높은 starch 기질을 효소반응에 적용하지는 못하였다. 하지만, 본 연구의 결과로부터 20% 이상의 starch 기질 제조가 가능한 기질제조방법의 검토 또는 고농도 용해가 가능한 starch 기질의 검토가 이루어진다면 Fungamyl 800L의 가수분해 활성에 의해 보다 더 높은 D-glucose를 starch로부터 생산 가능할 것으로 기대되며, 이러한 결과는 최종적으로 starch로부터 D-fructose 생산의 향상에도 기여할 수 있을 것으로 기대된다.

Fig. 3. Effect of starch concentration on the production of D-glucose from starch by Fungamyl 800L. Various concentrations of starch were prepared as substrates for Fungamyl 800L and then each reaction was carried out at pH 5.0 and 55°C for 4 hours. After the reaction, D-glucose produced from starch in each reaction was analyzed in the Bio-LC system using a CarboPac PAI column. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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본 연구에서 규명한 20% starch로부터 D-glucose를 생산하는데 있어서 최적의 효소농도를 규명하기 위하여 20% starch와 10-160 U/g 농도 범위의 Fungamyl 800L을 각각 반응하여 효소반응에 의해 생산된 D-glucose를 분석하였다. 그 결과, 효소 농도가 증가하면 할수록 starch로부터 생산되는 D-glucose량은 향상되었으며, 80 U/g과 160 U/g의 효소 농도에서는 반응 4시간 후에 D-glucose 생산량이 56 g/L의 최대 생산량에 도달하는 것으로 확인되었다(Fig. 4). 그리고, 10, 20, 40 U/g의 효소 농도에서는 반응시간 4시간 이후에 D-glucose 생산량이 각각 13, 24, 40 g/L로 80, 160 U/g의 효소량에서 확인되었던 D-glucose의 최대 생산량에 도달하지 못하는 것으로 검토되었다(Fig. 4). 본 반응에 있어서 효소 반응을 10시간까지 증가시켜 Fungamyl 800L 가수분해반응에 의해 생산되는 D-glucose를 분석하였는데, 4시간 효소 반응 후 생산된 D-glucose와 큰 변화 없이 일정하게 D-glucose 생산량이 유지되는 특성을 모든 효소 농도 범위에서 보였으므로(data not shown), 이러한 결과로부터 80 U/g의 Fungamyl 800L를 이용하여 20% starch와 4시간의 효소반응이 starch로부터 D-glucose를 생산하는 최적의 반응 조건임을 확인하였다.

Fig. 4. Effect of Fungamyl 800L concentration on the production of D-glucose from 20% starch. The Fungamyl 800L activity was adjusted 10-160 U/g (10 (open diamond), 20 (closed diamond), 40 (open circle), 80 (closed circle), and 160 U/g (open square)) and then each enzyme was reacted with 20% starch at pH 5.0 and 55°C for 10 hour. After the reaction, D-glucose produced from starch in each reaction was analyzed in the Bio-LC system using a CarboPac PAI column. 10 U/g (Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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본 연구에서는 효소활성이 상이한 두 종류의 효소를 적용하여 starch로부터 D-fructose를 생산하기 위하여 두 효소를 순차적으로 반응하는 방법과 동시에 효소 반응을 진행하는 2가지 방법으로 효소 반응을 진행하였다. 순차적 효소 반응에 의한 starch로부터 D-fructose 생산방법에서는 첫 번째 효소 반응으로서 전분가수분해효소인 Fungamyl 800L를 starch와 반응시킨 후 Fungamyl 800L의 가수분해 활성에 의해 starch로부터 D-glucose를 생산하고, 생산된 D-glucose는 glucose isomerase의 이성화반응에 의해 D-fructose를 생산하는 효소의 순차적인 반응으로 구성되어져 있다. 본 연구에서 starch로부터 D-fructose를 생산하는 공정에 적용한 amylase인 Fungamyl 800L과 Streptomyces murinus 유래 glucose isomerase의 최적온도는 55°C로 동일하였지만, 최적 pH가 각각 5.0과 7.5로서 매우 상이한 특성을 보이고 있었다. 본 반응은 starch로부터 D-glucose를 생산하기 위하여 Fungamyl 800L을 반응시킨 후 순차적으로 glucose isomerase를 첨가하여 D-fructose를 생산하는 연속반응으로 진행되기에 첫 번째 효소반응인 Fungamyl 800L의 반응에서 저농도의 buffer에서 반응이 진행된다면 뒤이어 첨가되는 glucose isomerase에 대한 최적 pH 조건을 보다 더 용이하게 설정할 수 있어서 pH 특성이 상이한 가수분해효소와 이성화 효소의 순차적인 연속반응을 통해 starch로부터 D-fructose를 보다 더 원활하게 생산 할 수 있는 효소 반응 조건을 확립할 수 있을 것으로 기대하였다. 그러나 buffer의 농도는 효소활성에 영향을 미치는 중요한 반응조건으로 보고되어 있기에(Reshmi 등, 2006), 본 연구에서는 Fungamyl 800L에 의한 starch로부터 D-glucose 생산에 있어서 buffer 농도가 미치는 영향을 검토하였다. Buffer로서 1-50 mM 농도의 citric acid buffer(pH 5.0)를 이용하여 20% starch 기질을 제조하여 Fungamyl 800L과 55°C에서 4 h 반응시킨 후 생산된 D-glucose를 검토하였다. Starch로부터 D-glucose 생산에 있어서 Fungamyl 800L은 효소 반응 4시간 후에 buffer 농도의 영향을 받지 않고 모든 농도의 buffer로 제조된 starch 기질로부터 D-glucose 생산량의 변화를 보이지 않고 최대 생산량에 도달하는 것으로 확인되었다(Fig. 5). 이러한 결과로부터 Fungamyl 800L은 starch로부터 D-glucose 생산에 있어서 1-50 mM buffer 농도의 범위에서는 buffer 농도의 영향을 받지 않는다는 것을 알 수 있었다. Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 순차적인 효소반응에 의해 starch로부터 D-fructose를 생산하는 반응에 있어서 첫 번째 반응으로 Fungamyl 800L에 의해 진행되는 starch 가수분해 반응은 pH 5.0에서 진행되는 반응으로서 뒤이어 진행되는 glucose isomerase 효소반응에 요구되는 pH 7.5와는 상이한 pH 조건이라고 할 수 있다. 순차적 효소 반응에 있어서 뒤이어 반응하는 glucose isomerase의 pH 7.5 환경을 보다 더 원활하게 조성하는 것이 효율적으로 효소 반응을 진행시킬 수 있을 것으로 판단되어, Fungamyl 800L에 의해 진행되는 starch로부터 D-glucose를 가수분해 반응의 pH 환경을 최대한 낮은 농도의 buffer에 의해 조성된다면 뒤이어 순차적으로 진행되는 glucose isomerase가 요구하는 pH 7.5 환경을 보다 더 효과적으로 조성할 수 있을 것으로 기대되었다. 이러한 연구 결과로부터, 본 연구에서는 최저 농도인 1 mM의 citric acid buffer(pH 5.0)를 이용하여 Fungamyl 800L에 의한 starch로부터 D-glucose 생산 반응을 수행하였다.

Fig. 5. Effect of buffer concentration on Fungamyl 800L activity. The Fungamyl 800L was mixed with 20% starch prepared in various concentrations of citric acid buffer (pH 5.0) at 55°C for 4 h. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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Glucose isomerase는 D-glucose를 이성화 반응에 의해 D- fructose로 전환하는 효소로서(Tsumura과 Sato, 1965), starch로부터 생산된 D-glucose로부터 D-fructose를 생산하기 위해서는 glucose isomerase에 의한 starch로부터 생산된 D-glucose의 이성화반응이 요구된다. 따라서, 본 연구에서도 이성화반응을 통하여 D-glucose로부터 D-fructose를 생산하기 위하여 상업용 효소인 Streptomyces murinus 유래 glucose isomerase를 이용하여 연구를 수행하였다. Fugamyl 800L의 가수분해 활성을 통해 starch로부터 생산된 D-glucose를 D-fructose를 전환하는데 요구되는 최적의 glucose isomerase 농도를 검토하였다. Fungamyl 800L에 의해 starch로부터 생산된 D-glucose에 2.8-35 U/mL 농도 범위의 S. murinus 유래 glucose isomerase를 각각 농도별로 첨가하여 pH 7.5, 55°C 조건에서 반응을 진행시킨 후 D-fructose 생성량을 비교 검토하였다. 본 연구로부터 D-glucose는 glucose isomerase의 농도가 증가함에 따라 D-fructose의 생산량이 지속적으로 증가하는 특성을 보였다(Fig. 6). 하지만, 본 연구에 사용한 glucose isomerase는 고정화 효소로 제조되어 있는 효소로서 일정한 부피를 보유하고 있어서 35 U/mL보다 높은 농도의 glucose isomerase 첨가는 어려움이 있었다. 따라서, 본 연구에서는 glucose isomerase로서 최대로 적용할 수 있는 35 U/mL의 glucose isomerase를 이용하여 starch로부터 생산된 D-glucose를 D-fructose로 전환하는데 사용하였다. 하지만, 본 연구의 결과로부터 glucose isomerase의 첨가 농도를 향상시킬 수 있는 연구방법이 구축된다면 starch로부터 보다 더 효율적으로 D-fructose를 생산할 수 있는 시스템이 구축될 수 있다는 것이 시사되었다.

Fig. 6. Effect of glucose isomerase concentration on D-fructose production from D-glucose. Each glucose isomerase prepared in various units was added into the reaction mixture reacted with starch and Fungamyl 800L at pH 7.5 and 55°C for 20 min. After the reaction, D-fructose produced in each reaction was analyzed in the Bio-LC system using a CarboPac PAI column. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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Starch로부터 생산된 D-glucose로부터 D-fructose를 생산하기 위한 glucose isomerase의 최적 반응시간을 규명하기 위하여, starch와 Fungamyl 800L의 반응에 의해 생산된 D-glucose (56 g/L)에 glucose isomerase(35 U/mL)를 첨가하여 pH 7.5, 55°C 조건에서 반응시간에 따른 D-fructose 생산량을 검토하였다. 그 결과, glucose isomerase 첨가 후 반응시간이 증가할수록 D-fructose의 생산량은 지속적으로 증가하다가 반응 2시간에 도달하였을 때, D-fructose의 최대 생산량(18.7 g/L)을 나타내었으며, 반응 2시간 이후에는 반응시간이 증가하여도 D-fructose 생산량의 증가는 보이지 않았다(Fig. 7). Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 순차적 효소반응 (sequential enzyme reaction)에 의해 starch로부터 D-fructose 생산에 있어서, 첫 번째 반응인 20% starch와 Fungamyl 800L의 반응에 의해 약 56 g/L의 D-glucose가 생산되었다. 그리고, 순차적으로 뒤이은 glucose isomerae의 이성화반응에 의해 starch로부터 생산된 56 g/L의 D-glucose로부터 18.7 g/L의 D-fructose가 최종적으로 생산되면서 약 33.3%의 전환률로 D-glucose로부터 D-fructose가 생산되는 것으로 검토되었다. 현재까지 보고되어져 전분질을 이용한 D-fructose 생산에 있어서, Regy Johnson(Johnson 등, 2009) 등의 연구에 따르면, 카사바와 고구마에서 추출된 D-glucose로부터 D-fructose로의 전환율은 37-38%로 보고되어져 있는데, 본 연구에서 Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 순차적 반응에 의해 starch로부터 D-fructose의 생산도 유사한 결과를 나타내었다. 본 연구의 결과로부터 고농도 starch 기질의 제조 및 고농도 glucose isomerase 적용 기술의 개발은 향후 amylase와 glucose isomerase의 순차적 반응에 의해 보다 더 효율적인 D-fructose 생산기술로 적용될 수 있을 것으로 기대되어졌다.

Fig. 7. Effect of enzyme reaction time on D-fructose production. The glucose isomerase (35 U/mL) was added in the reaction solution including D-glucose from starch to produce D-fructose. And then the reaction was carried out at pH 7.5 and 55°C for 3 h. After the reaction, D-fructose produced in each reaction was analyzed in the Bio-LC system using a CarboPac PAI column. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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본 연구에서는 Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 동시 반응에 의해 starch로부터 D-fructose 생산에 대하여 검토하였다. 두 효소를 starch와 동시에 반응하기 위해서는 두 효소의 동시 반응에 요구되는 pH와 온도에 대한 조건의 규명이 중요한데, 두 효소의 최적 반응 온도는 55°C로 동일하였지만 효소 반응 최적 pH가 Fungamyl 800L은 pH 5.0, glucose isomerase는 pH 7.5로 상이하여, 두 효소의 동시 반응에 요구되는 pH 조건을 규명하고자 하였다. 두 효소의 동시반응을 위해, 기질과 각 효소 농도는 앞에서 진행한 순차적 효소반응에서 도출된 연구결과를 적용하여 20% starch, 80 U/g Fungamyl 800L, 그리고 35 U/mL glucose isomerase을 이용하였으며, 반응 온도는 55°C로 하여 두 효소의 동시반응에 효과적인 pH조건을 검토하였다. 두 효소를 pH 3.0-9.0 범위의 pH 환경에서 starch, Fungamyl 800L, glucose isomerase를 동시에 첨가하여 효소반응을 진행하면서 starch로부터 생산된 D-glucose 그리고, D-fructose를 분석 검토하였다. Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 동시반응에 의해 starch로부터 D-glucose, D-fructose를 검토한 결과, starch로부터 D-glucose의 생산에 있어서 pH 4.0, 5.0 부근의 산성 영역에서는 Fungamyl 800L의 가수분해 활성이 우세하여 starch로부터 D-glucose의 최대 생산의 특성을 보였다(Fig. 8A). 하지만, pH 7.0 이상의 조건에서는 D-glucose 생산이 약 50%까지 감소하는 결과를 나타내었다. 그리고, starch로부터 생산된 D-glucose를 D-fructose로 전환하는 glucose isomerase의 이성화 반응에 있어서 pH 5.0, 6.0 조건에서 최대의 D-fructose 생산을 나타내었다(Fig. 8B). 하지만, glucose isomerase의 최적 pH 환경인 7.5 부근의 조건에서는 D-fructose 생산이 약 70%까지 감소하는 결과를 보였다. 이러한 결과는 Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 동시 반응에 있어서 pH 7.0 이상의 조건에서는 Fungamyl 800L의 starch 가수분해 활성이 감소하여 D-fructose를 생산하는 기질인 D-glucose 생산이 원활하지 않아 glucose isomerase의 이성화 반응에도 영향을 미쳤을 것이라고 추측하였다. 이러한 연구 결과로부터 두 효소의 동시반응에 의해 starch로부터 D-fructose를 생산하는 반응은 Fungamyl 800L의 가수분해 활성과 glucose isomerase의 이성화 반응 활성의 감소에 영향을 미치지 않는 pH 5.0 조건에서 반응을 진행하기로 하였다.

Fig. 8. Effect of pH on the production of D-glucose (A) and D-fructose (B) by simultaneous enzyme reaction. The reactions were performed in 50 mM citric acid buffer (●, pH 3.0-6.0) or 50 mM phosphate buffer (◯, pH 6.0-8.0) or 50 mM Tris buffer (▲, pH 8.0-9.0) containing 20% of starch, 80 U/g of Fungamyl 800L and 35 U/mL of glucose isomerase at 55°C for 2 h. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 동시반응에 의해 starch로부터 D-fructose 생산을 검토하기 위하여 pH 5.0의 buffer로 제조된 20% starch에 두 효소를 동시에 첨가하여 55°C에서 반응을 진행하면서 일정시간 간격으로 반응시료를 채취하여 D-fructose 생산량을 분석하였다. Starch에 Fungamyl 800L를 반응시킨 후 glucose isomerase를 첨가하여 순차적인 효소 반응으로 starch로부터 D-fructose를 생산하는 방법에서는 반응 2시간 후에 D-fructose 생산이 최대 생산량인 18.7 g/L에 도달하였고, 그 후 반응시간이 증가하여도 D-fructose 생산량의 변화는 확인되지 않았었다(Fig. 7). 하지만, 기질 starch에 두 효소를 동시에 첨가하여 동시반응에 의해 starch로부터 D-fructose를 생산하는 반응에서는 반응 2시간까지 12.3 g/L의 D-fructose가 생산되어 순차적 효소반응과 비교하였을 때 약 65%의 D-fructose 생산성을 나타내었다. 하지만, 효소의 동시반응의 조건에서는 순차적인 효소반응과는 달리 반응시간이 증가하면 할수록 지속적으로 D-fructose 생산량이 증가하는 현상을 나타내었다. 반응 2시간 후에도 지속적으로 D-fructose 생산량이 증가하면서 반응 18시간 이후부터는 D-fructose 생산이 포화에 도달하면서 최종적으로 반응 22시간에서 약 39 g/L의 D-fructose가 생산되었다(Fig. 9). 이러한 결과는 효소의 순차적 반응보다 동시반응을 진행하였을 때 starch로부터 생산되는 D-fructose의 양은 약 2배 이상의 생산이 가능하다는 것을 시사해 주었다. 이러한 결과는 Fungamyl 800L과 glucose isomerase의 순차적 반응에서는 두 효소가 가지고 있는 pH의 특성이 상이하여 Fungamyl 800L의 효소반응 후 첨가되는 glucose isomerase의 활성을 위해 조성된 pH 7.5 조건에서는 Fungamyl 800L의 starch에 대한 가수분해 활성이 원활하지 않아 D-glucose의 공급이 더이상 이루어지지 않아서 glucose isomerase의 이성화반응이 진행되지 않았을 것이라고 예상되어졌다. 하지만, 두 효소의 동시 반응의 조건에서는 두 효소의 활성에 공통적으로 효과적인 pH 조건(pH 5.0)을 규명하여 효소 반응 환경을 조성한 것이 두 효소의 활성이 반응 중에도 지속되는데 효과적으로 영향을 미쳤다고 시사되어졌다. 두 효소의 동시반응에서 조성된 pH 5.0 조건에서는 Fungamyl 800L에 의한 starch 가수분해 활성 및 glucose isomerase에 의한 D-glucose를 D-frucose로 이성화하는 반응이 보다 더 장시간 지속될 수 있어서 최종적으로 starch로부터 D-fructose 생산이 반응시간이 증가하면 할수록 지속적으로 향상될 수 있었다고 판단되어졌다. 이러한 결과로부터 효소 특성이 상이한 2종류 이상의 효소들을 적용하여 다당체로부터 목적 단당류를 생산할 경우 각각의 효소의 최적조건을 적용하여 순차적인 효소 반응을 이용하는 것보다 두 효소의 활성에 효과적인 공통적인 효소반응 조건을 규명하여 효소들의 동시반응에 의한 목적 단당류 생산이 보다 더 효과적일 수 있다는 결과를 본 연구로부터 도출하였다. 이러한 효소 적용 기술은 향후 가수분해, 이성화 반응 또는 에피머반응과 같이 복합효소를 적용하여 다당체로부터 기능성 단당류를 생산할 수 있는 효소 적용 신기술로서 활용 될 수 있을 것으로 예상되며, 농산부산물의 재활용을 통하여 부가가치를 창출할 수 있는 미래 지향적 효소적용 생물전환 신기술로서도 활용될 수 있을 것으로 기대되어진다.

Fig. 9. Production of D-fructose from starch by simultaneous reaction of Fungamyl 800L and glucose isomerase. The reaction was performed simultaneously in 50 mM citric acid buffer (pH 5.0) containing 20% starch, 80 U/g of Fungamyl 800L and 35 U/mL of glucose isomerase at 55°C. Data represent the means of three experiments with standard deviation (p<0.05).

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